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Alterata IgA secretoria e immunità mucosa nella fibrosi cistica (Forton2015)

Compromissione delle IgA secretorie e dell'immunità delle mucose nella fibrosi cistica: contributo alla patologia polmonare e compromissione della difesa contro le infezioni batteriche

Questo progetto dal titolo "IgA secretorie compromesse e immunità mucosale nella fibrosi cistica" è un programma di ricerca che mira a determinare, grazie a collaborazioni nazionali (KULeuven) e internazionali (Università Descartes di Parigi, Università di Torino) per la competenza e l'accesso a materiale umano, se esiste un difetto per la produzione di anticorpi IgA nel polmone di pazienti con questa grave malattia genetica. Questi anticorpi rivestono e proteggono normalmente le vie aeree e sono secreti attraverso uno specifico recettore epiteliale chiamato pIgR (recettore dell'immunoglobulina polimerica); la sua espressione e regolazione sarà studiata nel tessuto polmonare e nelle colture cellulari dell'epitelio polmonare di questi pazienti. Il legame tra il presunto difetto di IgA e l'infezione batterica cronica da Pseudomonas aeruginosa, che spesso complica l'evoluzione della malattia, sarà valutato anche ex vivo e in vivo, in un modello animale di infezione polmonare.

Panoramica dello studio

Descrizione dettagliata

Alterazione delle IgA secretorie e dell'immunità della mucosa nella fibrosi cistica:

ruolo dei cambiamenti epiteliali correlati a CFTR nella regolazione della transcitosi IgA mediata da pIgR e contributo alla patologia polmonare e alla difesa compromessa contro le infezioni batteriche.

DESCRIZIONE DEL PROGETTO La fibrosi cistica (CF) rappresenta la malattia autosomica recessiva letale più comune nella popolazione bianca, che colpisce principalmente i polmoni. Ventiquattro anni dopo l'identificazione del gene responsabile della malattia, rimangono molti interrogativi, le cure attuali sono sintomatiche e rimane una malattia letale. Colpisce il gene Cystic Fibrosis Transmembrane Regulator (CFTR), che codifica per una proteina espressa sulla membrana apicale delle cellule epiteliali delle vie aeree, dove agisce come canale del cloruro cAMP-dipendente e regolatore di altri canali, incluso il canale epiteliale del Na+ (ENaC) . Le mutazioni del CFTR (F508del, 70% dei casi) provocano un malfunzionamento o la completa assenza della proteina CFTR sulla membrana apicale, a causa del misfolding proteico e della ritenzione nel reticolo endoplasmatico. Provoca difetti nell'efflusso di cloruro e nell'idratazione del fluido di rivestimento epiteliale, con conseguente muco anormalmente viscoso che può ostruire le vie aeree, il lume intestinale e i dotti ghiandolari (ad esempio nel pancreas). La disfunzione del CFTR porta anche all'attivazione pro-infiammatoria (ad esempio attraverso NFkB) dell'epitelio, con conseguente rilascio di CXCL8/IL8 (Sloane et al, 2005) e ridotta produzione di fattori protettivi come le a-defensine. La colonizzazione delle vie aeree e le infezioni polmonari sono un segno distintivo di questa malattia, in particolare con Pseudomonas aeruginosa (PA) che colpisce il 70% dei pazienti CF ed è associata a scarsi risultati clinici. Tuttavia, i meccanismi alla base della persistenza dei patogeni nelle vie aeree CF rimangono in gran parte poco chiari.

Questo progetto mira a indagare se la produzione di IgA secretorie (S-IgA) è compromessa nel polmone FC, attraverso quali meccanismi, e se questo difetto contribuisce alla patogenesi della FC compromettendo l'immunoprotezione contro i patogeni respiratori come la PA. L'S-IgA è un'importante linea di difesa della mucosa, attraverso la cosiddetta esclusione immunitaria di antigeni e agenti patogeni inalati/ingeriti (Norderhaug et al, 1999). Dopo la sintesi di IgA polimeriche (principalmente dimeriche) da parte delle plasmacellule della mucosa subepiteliale, le p-IgA vengono trasportate attraverso l'epitelio mediante un percorso transcellulare mediato dal recettore delle immunoglobuline polimeriche (pIgR). La P-IgA si lega alla pIgR al polo basolaterale dell'epitelio, ed è transcitosizzata fino al polo apicale, dove una scissione proteolitica libera la parte extracellulare della pIgR, chiamata componente secretoria (SC) che rimane legata alla p-IgA per forma S-IgA. Questo trasporto rappresenta il percorso transcellulare più importante nel corpo (3 g/giorno). La S-IgA è prodotta principalmente su stimolazione della mucosa da segnali microbici che agiscono attraverso i recettori Toll-like sulle cellule epiteliali e sulle cellule B (MacPherson et al, 2008) mentre le citochine (IFN-g, IL-4, IL-1 o TNF-a) può sovraregolare l'espressione di pIgR e/o la transcitosi (vedi recensione Pilette et al, 2001a).

Un difetto dell'espressione di pIgR è stato identificato nella broncopneumopatia cronica ostruttiva (BPCO) indotta dal fumo (Pilette et al, 2001b). La riduzione del pIgR nella BPCO potrebbe essere dovuta alla degradazione da parte delle serina proteinasi derivate dai neutrofili (Pilette et al, 2003), nonché alla compromissione della trascrizione genica (Gohy & Pilette, manoscritto presentato). A differenza della BPCO, non è chiaro se l'espressione di pIgR sia influenzata nella FC, attraverso quali meccanismi e, in caso affermativo, con quali conseguenze in termini di difesa della mucosa. La nostra ipotesi è che l'espressione di pIgR sia ridotta negli epiteli CF, come risultato dei cambiamenti epiteliali correlati a CFTR, e porti a un'alterata esclusione immunitaria mediata da IgA dei patogeni respiratori, favorendo così la colonizzazione batterica cronica e le infezioni polmonari nella FC. Gli obiettivi specifici di questo progetto sono i seguenti:

  1. per valutare l'espressione di pIgR e IgA nel tessuto bronchiale di pazienti CF, rispetto ai controlli. Ciò verrà eseguito sia in espianti polmonari da pazienti CF con malattia polmonare allo stadio terminale (11 da KULeuven e 18 da Parigi, già raccolti; rispetto a 7 espianti da controlli e a campioni chirurgici polmonari da non fumatori) e in biopsie bronchiali (n=8) e BAL (2x50mL) campionati durante le broncoscopie pre-trapianto (campionamento prospettico, KULeuven). I soggetti di controllo saranno pazienti senza FC e senza evidenza di malattia polmonare e che sono sottoposti a narcosi per un motivo indipendente presso il centro KULeuven. Inoltre, verrà analizzata anche una serie di espettorato (da pazienti FC e di controllo). I soggetti di controllo saranno costituiti da pazienti con BPCO e soggetti sani (fumatori e non). Saranno inoltre ottenute biopsie nasosinusali e rettali da FC, al fine di indagare i tessuti fibrosi della mucosa al di fuori dell'ambiente polmonare. Le letture consisteranno nell'espressione di pIgR sia a livello genico (RT-qPCR) che proteico (immunoistochimica, western blot), così come per IgA (immunoistochimica, RT-qPCR per IgA1 e IgA2). Inoltre, (S-)IgA e SC saranno misurate nei fluidi di lavaggio bronchiale e nell'espettorato.

    A livello globale, ci aspettavamo, se possibile, di analizzare 30 espianti, 30 endoscopie e 150 espettorati.

  2. per valutare gli anticorpi S-IgA contro i batteri respiratori nelle vie aeree CF: La rilevanza del deficit di S-IgA nella FC sarà valutata in relazione alla colonizzazione microbica delle vie aeree inferiori. In primo luogo, verrà testata la correlazione tra bassi livelli di S-IgA (sia IgA totali che IgA specifiche per patogeno) e colonizzazione da parte di patogeni - in particolare PA - nell'espettorato e nei fluidi di lavaggio bronchiale di pazienti CF. Inoltre, negli espianti polmonari verrà affrontata anche una relazione regionale/spaziale tra difetto S-IgA e colorazione PA. In secondo luogo, gli anticorpi IgA PA-specifici saranno dosati nel lavaggio bronchiale e nei fluidi dell'espettorato e correlati ai dati di colonizzazione.
  3. per valutare il contributo del difetto di S-IgA alla patologia polmonare nei topi CFTR KO: Il potenziale contributo del deficit di S-IgA alla malattia polmonare CF sarà valutato in vivo, utilizzando topi CFTR KO. Poiché questi topi KO non ricapitolano il fenotipo CF umano, approfitteremo della nostra osservazione pilota che l'esposizione ripetuta a LPS - che porta a un fenotipo simile alla BPCO (Juanita et al, 2002) - si traduce in una downregulation di pIgR/SC (vedi " Risultati ottenuti"). Valuteremo quindi se il deficit di pIgR indotto dall'esposizione cronica a LPS promuova nei topi CFTR KO lo sviluppo di una patologia polmonare con caratteristiche CF. Di conseguenza, i topi KO doppi (CFTR, pIgR) potrebbero essere generati per affrontare direttamente il contributo del deficit di pIgR alla patologia polmonare in combinazione con la mutazione CFTR. Inoltre, verrà utilizzato un secondo modello che imita l'infezione persistente da PA (Martin et al, 2011) per affrontare gli effetti della PA nei topi CFTR e/o pIgR KO. I topi Beta-eNaC Tg hanno una patologia polmonare di base e potrebbero anche essere ottenuti e infettati da un modello di infezione PA (microbeads, Pr Burgel). Le letture includeranno analisi istomorfologiche e biomolecolari (risposte infiammatorie e citochiniche) e test di funzionalità polmonare (FlexiVent).
  4. per esplorare i meccanismi di downregulation di pIgR nell'epitelio CF: poiché la linea cellulare CFBE 41o (che esprime wt o mutante F508del CFTR; Bruscia et al, 2002) non esprime livelli significativi di pIgR (vedi "Risultati ottenuti"), l'epitelio bronchiale umano primario cellule (HBEC) saranno utilizzate per valutare se la downregulation di pIgR è mantenuta nell'epitelio CF coltivato in vitro. Colture primarie in interfaccia aria-liquido (ALI) di HBEC saranno effettuate da pazienti CF, rispetto ai controlli (protocollo attivo nel laboratorio del PI nella BPCO; saranno utilizzate anche cellule di EpithelixR; così come colture nasali cellule da CF (de Courcey et al, 2012)). Le colture ALI consentono di valutare le funzioni cellulari in un epitelio delle vie aeree muco-ciliari polarizzato e ricostituito, a riposo o stimolato da LPS e/o IL-1. Se l'espressione di pIgR è diminuita anche nell'epitelio CF in vitro, potrebbe essere correlata al difetto del gene CFTR e/o alla memoria epigenetica dell'imprinting in vivo dell'epitelio da parte del microambiente infiammatorio. Distingueremo quindi queste possibilità utilizzando inibitori CFTR (CFTR-inh172, PPQ-102; Martin et al, 2013). Un altro meccanismo post-trascrizionale della disfunzione di pIgR include il suo errato indirizzamento alla membrana cellulare: verrà valutata la relazione tra l'espressione disturbata di ciascun recettore (CFTR apicale, pIgR basale). Le letture includeranno l'espressione di pIgR valutata mediante immunocolorazione (di filtri) e western blot, e mediante RT-qPCR. La funzione del pIgR sarà testata misurando la capacità dell'epitelio ALI di transcitosi IgA dimerica dal compartimento basolaterale a quello apicale. L'indirizzamento di membrana di CFTR (apicale) e pIgR (basale) sarà studiato mediante microscopia confocale.

Tipo di studio

Osservativo

Iscrizione (Anticipato)

200

Contatti e Sedi

Questa sezione fornisce i recapiti di coloro che conducono lo studio e informazioni su dove viene condotto lo studio.

Luoghi di studio

Criteri di partecipazione

I ricercatori cercano persone che corrispondano a una certa descrizione, chiamata criteri di ammissibilità. Alcuni esempi di questi criteri sono le condizioni generali di salute di una persona o trattamenti precedenti.

Criteri di ammissibilità

Età idonea allo studio

18 anni e precedenti (Adulto, Adulto più anziano)

Accetta volontari sani

No

Sessi ammissibili allo studio

Tutto

Metodo di campionamento

Campione di probabilità

Popolazione di studio

Pazienti CF seguiti in un centro CF (UCL, KUL, Hôpital Cochin, Università di Torino) Pazienti di controllo (volontari sani per espettorato o pazienti sottoposti a chirurgia polmonare per altro motivo).

Descrizione

Criterio di inclusione:

FC: pazienti adulti affetti da FC (dai 18 anni) con un fenotipo clinico classico correlato alla mutazione DF508/DF508 e colonizzati o meno da Pseudomonas aeruginosa

Criteri di esclusione:

  • <18 anni
  • altre malattie polmonari croniche eccetto la BPCO come sottogruppo di controllo specifico

Piano di studio

Questa sezione fornisce i dettagli del piano di studio, compreso il modo in cui lo studio è progettato e ciò che lo studio sta misurando.

Come è strutturato lo studio?

Dettagli di progettazione

  • Modelli osservazionali: Coorte
  • Prospettive temporali: Prospettiva

Coorti e interventi

Gruppo / Coorte
Intervento / Trattamento
Fibrosi cistica
Pazienti con fibrosi cistica Mutazione DF508/DF508 di età superiore a 18 anni colonizzata o meno da Pseudomonas aeruginosa
Gli espianti polmonari da CF allo stadio terminale, ottenuti per un motivo indipendente dallo studio nei centri di Parigi (Prof Burgel) e Leuven (Prof Dupont), saranno analizzati per l'espressione di pIgR e IgA e per la colonizzazione da Pseudomonas aeruginosa. Alcuni espianti polmonari di pazienti di controllo saranno ottenuti anche dal centro di Leuven.
Verranno raccolti campioni di espettorato, nasale (fluido) e siero da pazienti CF e pazienti di controllo (Leuven, Parigi, Torino, Verona e Saint-Luc Bruxelles) per S-IgA e test microbiologici. Verrà raccolto l'espettorato spontaneo, mentre il liquido nasale verrà prelevato mediante lavaggio nasale. I soggetti di controllo saranno costituiti da pazienti con BPCO e soggetti sani (fumatori e non).
Biopsie endobronchiali (EBB) e lavaggi bronco-alveolari (BAL) saranno prelevati presso il centro KULeuven (Prof Dupont) in alcuni pazienti CF (omozigoti per la mutazione DF508) e colonizzati o meno da Pseudomonas aeruginosa e che devono essere sottoposti ad anestesia generale per un motivo indipendente dallo studio. In questi pazienti verrà eseguita un'endoscopia bronchiale durante la narcosi per rilevare EBB (n=8) e BAL (2x50mL). Se possibile, in alcuni pazienti verranno eseguite anche biopsie nasali e rettali. I campioni saranno valutati per l'espressione di pIgR e IgA e per colture broncoepiteliali primarie (eseguite presso il centro UCL, Pr Pilette). I soggetti di controllo saranno pazienti senza FC e senza evidenza di malattia polmonare e che sono sottoposti a narcosi per un motivo indipendente presso il centro KULeuven.
Controlli
Controlla i pazienti Più di 18 anni Senza CF Fumatori o non fumatori
Gli espianti polmonari da CF allo stadio terminale, ottenuti per un motivo indipendente dallo studio nei centri di Parigi (Prof Burgel) e Leuven (Prof Dupont), saranno analizzati per l'espressione di pIgR e IgA e per la colonizzazione da Pseudomonas aeruginosa. Alcuni espianti polmonari di pazienti di controllo saranno ottenuti anche dal centro di Leuven.
Verranno raccolti campioni di espettorato, nasale (fluido) e siero da pazienti CF e pazienti di controllo (Leuven, Parigi, Torino, Verona e Saint-Luc Bruxelles) per S-IgA e test microbiologici. Verrà raccolto l'espettorato spontaneo, mentre il liquido nasale verrà prelevato mediante lavaggio nasale. I soggetti di controllo saranno costituiti da pazienti con BPCO e soggetti sani (fumatori e non).
Biopsie endobronchiali (EBB) e lavaggi bronco-alveolari (BAL) saranno prelevati presso il centro KULeuven (Prof Dupont) in alcuni pazienti CF (omozigoti per la mutazione DF508) e colonizzati o meno da Pseudomonas aeruginosa e che devono essere sottoposti ad anestesia generale per un motivo indipendente dallo studio. In questi pazienti verrà eseguita un'endoscopia bronchiale durante la narcosi per rilevare EBB (n=8) e BAL (2x50mL). Se possibile, in alcuni pazienti verranno eseguite anche biopsie nasali e rettali. I campioni saranno valutati per l'espressione di pIgR e IgA e per colture broncoepiteliali primarie (eseguite presso il centro UCL, Pr Pilette). I soggetti di controllo saranno pazienti senza FC e senza evidenza di malattia polmonare e che sono sottoposti a narcosi per un motivo indipendente presso il centro KULeuven.

Cosa sta misurando lo studio?

Misure di risultato primarie

Misura del risultato
Lasso di tempo
Valutazione dell'espressione di pIgR e IgA nel tessuto bronchiale di pazienti CF, rispetto ai controlli.
Lasso di tempo: 3 anni
3 anni

Misure di risultato secondarie

Misura del risultato
Lasso di tempo
Valutazione degli anticorpi S-IgA contro i batteri respiratori nelle vie aeree CF
Lasso di tempo: 3 anni
3 anni

Collaboratori e investigatori

Qui è dove troverai le persone e le organizzazioni coinvolte in questo studio.

Investigatori

  • Investigatore principale: Charles Pilette, MD, PhD, Cliniques universitaires Saint-Luc- Université Catholique de Louvain

Studiare le date dei record

Queste date tengono traccia dell'avanzamento della registrazione dello studio e dell'invio dei risultati di sintesi a ClinicalTrials.gov. I record degli studi e i risultati riportati vengono esaminati dalla National Library of Medicine (NLM) per assicurarsi che soddisfino specifici standard di controllo della qualità prima di essere pubblicati sul sito Web pubblico.

Studia le date principali

Inizio studio

1 novembre 2015

Completamento primario (Anticipato)

1 dicembre 2017

Completamento dello studio (Anticipato)

1 dicembre 2017

Date di iscrizione allo studio

Primo inviato

2 dicembre 2014

Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità

3 dicembre 2014

Primo Inserito (Stima)

4 dicembre 2014

Aggiornamenti dei record di studio

Ultimo aggiornamento pubblicato (Stima)

25 febbraio 2016

Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC

24 febbraio 2016

Ultimo verificato

1 febbraio 2016

Maggiori informazioni

Queste informazioni sono state recuperate direttamente dal sito web clinicaltrials.gov senza alcuna modifica. In caso di richieste di modifica, rimozione o aggiornamento dei dettagli dello studio, contattare register@clinicaltrials.gov. Non appena verrà implementata una modifica su clinicaltrials.gov, questa verrà aggiornata automaticamente anche sul nostro sito web .

Prove cliniche su Fibrosi cistica

Prove cliniche su Espianti polmonari

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