Dolor postoperatorio y eficacia antibacteriana después de la irrigación del conducto radicular con curcumina o hipoclorito de sodio

Se seleccionarán pacientes con molares mandibulares necróticos.

1. Procedimientos de diagnóstico:

   • Se obtendrá información personal (nombre, edad, sexo, dirección y número de teléfono), historiales médicos y dentales completos utilizando gráficos esquemáticos de todos los pacientes que participen en esta investigación.
   • El historial de la queja principal se obtendrá en el cuadro de historial dental.
   • Se registrará la evaluación clínica y radiográfica de cada diente incluido en este estudio. Se examinará el diente para detectar la presencia de caries extensas o exposiciones pulpares. El examen de los tejidos blandos y la evaluación de la movilidad dental se realizarán mediante percusión y palpación.
   • El examen extraoral se realizará mediante la inspección visual de la cara y el cuello y la palpación de los ganglios linfáticos inflamados.
   • Se evaluará la sensibilidad de cada diente utilizando un probador pulpar eléctrico. El diagnóstico también se confirmará por la ausencia de sangrado después de la preparación de la cavidad de acceso.
   • Diagnóstico final: molares necróticos asintomáticos mandibulares maduros con apariencia radiográfica periapical normal.
   • El operador explicará explícitamente los pasos del ensayo a los pacientes, y los pacientes que acepten la inscripción firmarán un consentimiento informado.
   • Se le entregará a cada paciente un cuadro de escala de dolor para calificar su nivel de dolor antes del tratamiento de endodoncia como lectura preoperatoria utilizando una escala de calificación numérica (NRS).

2. Procedimientos de endodoncia:

   • Todos los pasos realizados del tratamiento de conducto se incluirán en la tabla de procedimientos de endodoncia.
   • El diente se aislará con un dique de goma para mantener el campo aséptico; después del aislamiento, el diente y el campo circundante se desinfectarán mediante un protocolo que utiliza peróxido de hidrógeno al 3 % e hipoclorito de sodio al 2,5 % antes y después de la preparación de la cavidad del acceso coronal.
   • La muestra inicial S1 se recogerá de los conductos radiculares antes de la preparación utilizando puntas de papel estériles. Cada conducto radicular se secará con 3 puntas de papel estéril ISO#15 las cuales se dejarán dentro del conducto radicular por 1 minuto cada una con movimientos de bombeo para generar una suspensión con bacterias de la zona pulpar principal.
   • Las puntas de papel se colocarán inmediatamente en tubos de ensayo estériles que contengan un medio de transporte reducido de tioglicolato y se enviarán al Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Medicina de la Universidad de El Cairo para su procesamiento microbiológico y su cultivo en el plazo de una hora.
   • Los conductos radiculares se prepararán mecánicamente en un enfoque de corona hacia abajo utilizando limas ProTaper Universal NiTi en un motor de endodoncia X-Smart de acuerdo con las instrucciones de fabricación.
   • Los canales se irrigarán minuciosamente entre cada dos limas subsiguientes con 2 ml de NaOCl al 2,5 % con una aguja con ventilación lateral (calibre 29) para controlar la posibilidad de extrusión apical del irrigante.
   • Después de la preparación completa del conducto radicular, todos los conductos se lavarán con EDTA al 17 % seguido de solución salina estéril.

3. Asignación aleatoria:

   • De acuerdo con la secuencia de aleatorización, después de la preparación completa del conducto radicular, los pacientes serán asignados a uno de 2 grupos:

     • Grupo de intervención (G1): cada canal se enjuagará con 5 ml de solución de curcumina en una jeringa de plástico con una aguja con ventilación lateral (calibre 29) insertada 1 ml más corta que la longitud de trabajo.
     • Grupo de comparación (G2): cada canal se enjuagará con 5 ml de hipoclorito de sodio al 2,5 % en una jeringa de plástico con una aguja con ventilación lateral (calibre 29) insertada 1 ml más corta que la longitud de trabajo.
   • Después de enjuagar los canales con cada solución de irrigación, todos los canales se enjuagarán con 10 ml de solución salina estéril y la muestra final S2 se recolectará de la misma manera que S1 usando puntas de papel estériles ISO # 30/0.02 o # 40/0.02, correspondiente al tamaño de la lima apical maestra F3 o F4, respectivamente.
   • Los conductos radiculares se secarán con puntas de papel ProTaper. Los conductos radiculares se obturarán mediante la técnica de cono único modificado con sellador de conductos radiculares a base de resina y conos de gutapercha ProTaper tamaño F3 o F4 según el tamaño de la lima de acabado final, junto con conos auxiliares ISO # 25/0.02.
   • Después de la obturación, se colocará una bolita de algodón en la cámara pulpar y la cavidad de acceso se sellará con un empaste temporal.
   • A todos los pacientes se les pedirá que registren su nivel de dolor posoperatorio en la escala de calificación numérica (NRS) a las 8, 24 y 48 horas después de la operación.