- ICH GCP
- 미국 임상 시험 레지스트리
- 임상시험 NCT03330834
진행성 폐암에 대한 CAR-T 세포 면역요법
표준 치료 실패 후 진행성 폐암 환자에서 CAR-T 세포 면역 요법의 안전성 및 독성: 단일군 및 단일 센터 1상 임상 연구
PD-L1(Programmed Death-Ligand 1) 발현 양성으로 표준 치료에 실패한 NSCLC 환자들이 이 시험에 등록되었습니다. 약 22명의 진행성 NSCLC 환자가 기준에 따라 선별될 것입니다. 자격을 갖춘 환자를 모집하고 정보에 입각한 동의서에 서명합니다. 참가자는 입원하고 임상 검사를 받게 됩니다.
Ficoll 방법을 사용하여 말초 혈액 세포와 수집된 T 세포를 원심 분리하기 위해 적절한 양의 말초 혈액을 채취합니다(66ml에서 360ml, 체중 및 혈액 정기 검사에 따라 다름). PD-L1 CAR 유전자는 T 세포 활성화 분자(Cluster of Differentiation 137(CD137/CD28) 및 Cluster of Differentiation 3(CD3) 제타 세포 내 도메인)와 PD-L1 단일 사슬로 구성된 렌티바이러스 벡터에 클로닝되어 있습니다. PD-L1 단클론 항체의 가변 영역에서 파생된 가변 단편(scFv). 그런 다음 연구자들은 환자로부터 분리된 자가 T 세포를 형질도입하는 데 사용될 인간 배아 신장(293T) 세포에 유사 렌티바이러스 입자를 패키징했습니다. CAR 양성 T 림프구는 형광 라벨링된 염소 항-인간 F(ab')2를 갖는 FACS에 의해 결정될 것이다. 플라스미드, 슈도-렌티바이러스 입자 및 형질도입된 T 세포는 제3자에 의해 규정된 테스트를 받게 됩니다.
환자는 백혈구 감소 화학요법(시클로포스파미드: 250mg/m^2 × 3일; 플루다라빈: 25mg/m^2 × 3일)을 받게 됩니다. 하루 후 화학 요법 효과가 평가됩니다. PD-L1 CAR-T 세포는 0일에 10%, 3일에 30%, 7일에 60%를 주입합니다(총 수는 (1-2)×10^6/kg). 환자는 부작용이 있는지 면밀히 관찰하고 부작용이 발생한 경우 지지 요법을 제공합니다.
환자는 14일에 퇴원하고 연구 계획에 따라 2년 동안, 즉 처음 3개월 동안 한 달에 한 번; 첫 해에는 두 달에 한 번; 그 이후로 두 번째 해에는 분기에 한 번. 순환계에서 PD-L1 CAR-T 세포의 지속성은 형광 활성화 세포 분류(FACS) 및 중합효소 연쇄 반응(PCR)에 의해 모니터링됩니다. 환자가 코어 바늘 생검을 받는 경우, 종양 조직에서 CAR 양성 세포의 침윤이 면역조직화학(IHC)에 의해 평가될 것이다. CAR-T 세포 면역요법의 안전성 프로파일과 항종양 효능은 CTCAE v4.1 및 RECIST v1.1을 기반으로 전 과정에서 평가될 예정이다.
연구 개요
상세 설명
폐암의 이환율과 사망률은 모든 악성 종양 중 첫 번째입니다. 표피 성장 인자 수용체(EGFR) 티로신 키나아제 억제제(TKI) 및 활성화 림프구 키나아제(ALK)-TKI와 같은 표적 치료가 비소세포폐암(NSCLC) 환자의 생존을 연장할 수 있지만 약물 내성은 거의 필연적으로 발생합니다.
최근 몇 년 동안 Nivolumab 및 Pembrolizumab과 같은 PD-L1/PD-1 항체는 흑색종 및 폐암과 같은 암 치료에서 만족스러운 치료 잠재력을 보여줍니다. 최신 임상 조사에 따르면 항 PD-1 또는 PD-L1 항체 요법이 환자의 생존을 연장할 수 있지만 실제로는 환자의 20%만이 혜택을 받았습니다.
키메라 항원 수용체 T-세포(CAR-T)는 슈도-렌티바이러스 형질도입에 의해 유전적으로 변형된 T 림프구로 종양 항원에 대한 높은 결합 친화도 및 특이성을 제공합니다. 그 친화력은 주요 조직 적합성 복합체(MHC)와는 별개로 CAR에 의해 제공되었습니다.
CAR-T 세포 면역요법은 급성 림프구성 백혈병(ALL) 치료에 엄청난 성공을 거두었습니다. 분화 클러스터(CD)-19 CAR-T 세포 치료는 난치성 및 재발성 ALL에 대해 최대 92%의 완전 반응률을 기록했습니다. Her2/neu를 표적으로 하는 CAR-T 세포를 환자에게 투여하였을 때 폐 상피세포에서 Her2/neu의 발현이 미약하여 심폐부전으로 사망하였다. 대조적으로 Her2/neu 항체(트라스투주맙)는 유방암 환자를 치료하기 위해 임상에서 안전하게 광범위하게 적용됩니다. 이는 CAR-T 세포가 더 강력하다는 것을 강력하게 시사합니다.
따라서 연구자들은 종양 세포 PD-L1을 표적으로 하는 CAR이 CAR-T 세포의 효능을 크게 향상시키고 고형 종양, 특히 폐암 치료에 적용을 확장할 것이라는 가설을 세웠습니다. 연구자들은 종양 세포에서 발현되는 PD-L1을 표적으로 하는 PD-L1 CAR 유전자를 설계하고 복제했습니다. PD-L1 CAR-T 세포가 생체 내에서 PD-L1 양성 종양 세포뿐만 아니라 종양 내부의 면역 억제 세포(예: 골수 유래 억제 세포(MDSC))도 효과적으로 죽일 수 있다는 점을 감안할 때 면역 억제 종양 미세 환경을 현저하게 개선할 수 있습니다. 따라서 그들은 종양 세포에 대한 PD-L1 CAR-T 세포의 살상 효과를 크게 향상시킬 수 있는 종양 세포를 죽이는 시너지 효과를 달성하기 위해 종양 침윤된 T-림프구(TIL)의 기능을 복원할 수 있으며, 심지어 종양을 제거할 수도 있습니다.
전임상 연구는 PD-L1 CAR-T 세포가 시험관 내에서 PD-L1 양성 종양 세포에 의해 활성화될 수 있고 상당한 살상 효과를 가짐을 보여주었습니다. 그들은 종양 성장을 억제했지만 마우스 이종이식 모델에서는 명백한 독성이 관찰되지 않았습니다. 연구자들은 진행성 NSCLC 환자 치료에 대한 1상 임상 연구에서 새로운 CAR-T 세포의 안전성과 효능을 조사하기로 결정했습니다.
연구 유형
등록 (실제)
단계
- 1단계
연락처 및 위치
연구 장소
-
-
Guangdong
-
Guangzhou, Guangdong, 중국, 510060
- Sun Yat-sen University Cancer Center
-
-
참여기준
자격 기준
공부할 수 있는 나이
건강한 자원 봉사자를 받아들입니다
연구 대상 성별
설명
포함 기준:
- 피험자는 8th Union for International Cancer Control/American Joint Committee on Cancer(UICC/AJCC) Staging System에 따라 병리학 및 임상 병기 ⅢB/Ⅳ로 비소세포폐암으로 진단되었거나 다중 모드 요법(방사선 요법) 후에 질병이 재발 또는 진행되었습니다. , 국소 진행성 병변을 치료하기 위한 외과적 절제 또는 근치적 방사선 요법/화학 요법).
- 재발성 또는 진행성 NSCLC가 표준 치료(PD-1/PD-L1 체크포인트 억제 요법을 포함하지 않는 수술, 방사선 요법 및 표적 요법) 후에 진행되었거나 화학 요법을 받기를 꺼리는 피험자.
- 피험자는 모집 전에 적어도 하나의 신선한 생검 표본과 적어도 10개의 염색되지 않은 섹션을 수집하기 위해 코어 바늘 생검을 다시 수행해야 합니다.
- TKI 또는 화학요법은 임상시험 0일 최소 21일 전에 중단해야 하며, 폐암의 방사선 요법은 임상시험 0일 최소 6개월 전에 중단해야 합니다. 피험자는 이전 치료가 중단된 후 기본 영상 스캔을 받아야 합니다.
- 병변은 RECIST 1.1 기준에 따라 CT 또는 MRI로 검출해야 합니다. 종양 영상은 임상 연구 시작 전 최소 28일 이내에 수행해야 합니다.
- 연령>=18세 및 체중>=40kg.
- PD-L1은 표준 치료(>10%) 후 진행성 폐암의 조직 생검에서 IHC에 의해 양성입니다. FDA 승인을 받은 Ventana PD-L1(SP142)은 참여 환자의 폐암 절편에서 PD-L1 발현 수준을 검출하는 데 사용됩니다.
- 기대 수명>=12주
- 동부 협력 종양학 그룹(ECOG) 점수≤ 2
- 가임기 여성이 치료를 시작하기 전 14일 이내에 혈액임신검사 결과가 음성이어야 하며 최종 추시까지 연간 1% 이하의 실패율로 피임법을 복용하기로 동의해야 합니다. 실패율이 없는 피임법 연간 1% 이상에는 난관 결찰술, 정관 절제술, 호르몬 피임약, 자궁 내 호르몬 방출 시스템 및 구리 자궁 내 장치(IUD)가 포함됩니다.
혈액학 및 간 및 신장 기능은 다음 실험실 값을 충족해야 합니다. 이러한 실험실 테스트는 첫 번째 치료용 세포 주입 전 7일 이내에 완료되어야 합니다.
테스트 및 실험실 값:
혈액학:
- 백혈구(WBC): >=3.5*10^9/L;
- 절대호중구수(ANC): >=1.5*10^9/L;
- 헤모글로빈(HGB): >=90g/L;
- 혈소판(PLT): >=80*10^9/L;
혈액 응고 기능:
PT, APTT, FIB, TT: 정상 범위 내;
간 기능:
- 아스파르트산 트랜스아미나제(AST):
- 알라닌 아미노전이효소(ALT):
- 총 빌리루빈(TIBC):
신장 기능:
혈청 크레아티닌(CR):
- 피험자는 이 연구에 기꺼이 참여하고 정보에 입각한 동의서에 서명하는 데 동의합니다.
제외 기준:
1차 세포치료 3일 전부터 체계적인 스테로이드 치료를 받고 있는 피험자.
알아채다:
- 코르티코스테로이드는 실험적 세포 치료 후 부작용(AE) 및 심각한 부작용(SAE)을 치료하는 데 사용될 수 있습니다.
- 매일 스테로이드 대체 요법을 받는 피험자가 임상 연구에 포함될 수 있습니다. 5-7.5mg/일 용량의 프레드니손 요법은 대체 요법입니다.
- 대체 요법으로 동등한 용량의 하이드로코르티손 치료를 받는 피험자도 임상 시험에 참여할 수 있습니다.
- 실험적 세포치료제 첫 투여 전 3주 이내에 전신적인 세포독성 화학요법, 생물학적 치료 또는 대수술을 받은 피험자 또는 실험적 세포치료제 첫 투여 전 6개월 이내에 30그레이(Gy) 이상의 폐 방사선을 받은 피험자.
- 이전에 CAR-T 및 사이토카인 유도 킬러(CIK) 세포와 같은 세포 치료 또는 항-PD-1 또는 항-PD-L1 항체 치료를 받은 피험자.
확인된 중추신경계(CNS) 전이 및/또는 암성 수막염이 있는 피험자.
알아채다:
뇌전이 치료를 받은 피험자는 대상자의 상태가 안정적이고(CNS 증상 없음) 치료 후 최소 4주(예: 수술 또는 RT). 피험자는 첫 번째 실험적 세포 치료를 받기 최소 3일 전에 호르몬 치료를 중단해야 합니다.
최근 2년 이내에 체계적인 치료(질병개선제, 부신피질호르몬제, 면역억제제 등)가 필요한 활동성 자가면역질환자.
알아채다:
대체 요법(부신 기능 장애 또는 뇌하수체 기능 장애를 치료하기 위한 티록신, 인슐린 또는 생리학적 코르티코스테로이드 대체 요법)은 전신 요법으로 간주되지 않습니다. 흡입 코르티코스테로이드 요법이 필요한 피험자는 이 시험에 포함될 수 있습니다. 백반증이 있거나 소아 천식이나 알레르기 질환의 장기 완화 상태에 있는 피험자가 이 시험에 포함될 수 있습니다.
- 간질성 폐렴 또는 경구 또는 정맥내 스테로이드 치료를 받는 폐렴 병력이 있는 피험자.
- 림프구를 형질도입하기 어려운 피험자(
- 동종 이식 또는 고형 장기 이식을 받은 피험자.
- 첫 번째 실험적 세포 치료 전 30일 이내에 생백신을 받았거나 받을 예정인 피험자. 비활성화 계절 독감 예방 접종이 허용됩니다.
- 정맥내 체계적 치료가 필요한 활동성 감염이 있는 피험자.
- 인간 면역결핍 바이러스(HIV)(HIV 1/2 항체 양성) 감염 이력이 있는 대상자.
- 활동성 B형 간염 또는 C형 간염이 알려진 피험자. HBsAg 양성 피험자는 제외됩니다. 활동성 C형 간염의 정의는 C형 간염 항체가 양성이지만 정량적 C형 간염 바이러스(HCV) RNA 결과가 검출 하한을 초과하는 것입니다.
- 치료 순응도에 영향을 미칠 수 있는 정신 장애 또는 약물 남용의 병력이 있는 피험자.
- 임신 또는 수유 중인 여성 또는 연구 기간 동안(스크리닝부터 최종 실험 세포 치료 후 60일까지) 임신할 것으로 예상되는 여성 또는 아내가 임신 중인 남성.
공부 계획
연구는 어떻게 설계됩니까?
디자인 세부사항
- 주 목적: 치료
- 할당: 해당 없음
- 중재 모델: 단일 그룹 할당
- 마스킹: 없음(오픈 라벨)
무기와 개입
참가자 그룹 / 팔 |
개입 / 치료 |
---|---|
실험적: 싱글 암
진행성 폐암을 치료하는 CAR-T 세포.
이 연구에는 하나의 팔만 있습니다.
모든 참가자는 스크리닝에 참석하고 임상 치료를 위해 설정된 기준을 충족합니다.
PD-L1 CAR-T 세포는 0일에 10%, 3일에 30%, 7일에 60%, (1-2)×10^6/kg PD-L1 CAR-T 세포 총량을 주입합니다.
|
약물: 플루다라빈. -4일부터 -2일까지 연속 3일 동안 플루다라빈(25mg/m2)을 주입합니다. 약물: 시클로포스파미드. -4일에서 -2일 사이에 사이클로포스파마이드(250mg/m2)를 연속 3일 동안 주입합니다. 환자는 PD-L1 CAR-T 세포에 이어 림프구 고갈에 대한 위의 화학 요법을 받게 됩니다. |
연구는 무엇을 측정합니까?
주요 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
---|---|---|
PD-L1 CAR-T 세포 치료와 관련된 치료 관련 부작용이 있는 참가자 수
기간: CAR-T 세포 주입일로부터 연구 완료까지, 평균 2년
|
증례 보고서 양식에 기록된 치료 관련 부작용, 활력 징후, 실험실 변수, 신체 검사, 심전도에 의해 평가됩니다. 치료 관련 부작용은 CTCae v4.02에 따라 평가 및 기록됩니다. 단 1명의 환자가 치료를 받은 후 연구가 종료되었기 때문에 통계 분석은 수행되지 않았습니다. |
CAR-T 세포 주입일로부터 연구 완료까지, 평균 2년
|
2차 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
---|---|---|
완전(CR) 또는 부분(PR) 종양 반응을 경험한 참가자 수
기간: 연구 완료까지 3개월마다, 평균 2년
|
종양 반응은 RECIST V1.1에 따라 평가될 것이다.
PR 또는 CR의 수로 계산된 전체 반응률/모든 환자가 치료를 받았다.
CR PR과 안정병의 수로 계산한 질병 조절률/모든 환자가 치료를 받았다.
|
연구 완료까지 3개월마다, 평균 2년
|
기타 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
---|---|---|
생체 내 PD-L1 CAR-T 세포 감시를 받은 환자 수
기간: CAR-T 세포 주입 후 7일째, 최대 2년마다 2개월마다
|
유세포 분석기를 사용하여 PD-L1 CAR-T 세포 수를 세고 주입 후 시간별로 CAR-T 세포의 존재를 계산했습니다.
|
CAR-T 세포 주입 후 7일째, 최대 2년마다 2개월마다
|
말초 혈액의 기능 B 세포 수 평가.
기간: 기준선, CAR-T 세포 주입 후 7일 및 30일
|
CAR-T 전/후 세포 치료의 면역 기능과 치료 안전성 및 효능의 상관 관계를 탐색합니다.
|
기준선, CAR-T 세포 주입 후 7일 및 30일
|
말초 혈액의 기능적 T 세포 수 평가.
기간: 기준선, CAR-T 세포 주입 후 7일 및 30일
|
CAR-T 전/후 세포 치료의 면역 기능과 치료 안전성 및 효능의 상관 관계를 탐색합니다.
|
기준선, CAR-T 세포 주입 후 7일 및 30일
|
공동 작업자 및 조사자
수사관
- 수석 연구원: Li Zhang, M.D., Sun Yat-sen University
간행물 및 유용한 링크
일반 간행물
- Pardoll DM. The blockade of immune checkpoints in cancer immunotherapy. Nat Rev Cancer. 2012 Mar 22;12(4):252-64. doi: 10.1038/nrc3239.
- Reck M, Rodriguez-Abreu D, Robinson AG, Hui R, Csoszi T, Fulop A, Gottfried M, Peled N, Tafreshi A, Cuffe S, O'Brien M, Rao S, Hotta K, Leiby MA, Lubiniecki GM, Shentu Y, Rangwala R, Brahmer JR; KEYNOTE-024 Investigators. Pembrolizumab versus Chemotherapy for PD-L1-Positive Non-Small-Cell Lung Cancer. N Engl J Med. 2016 Nov 10;375(19):1823-1833. doi: 10.1056/NEJMoa1606774. Epub 2016 Oct 8.
- Brahmer J, Reckamp KL, Baas P, Crino L, Eberhardt WE, Poddubskaya E, Antonia S, Pluzanski A, Vokes EE, Holgado E, Waterhouse D, Ready N, Gainor J, Aren Frontera O, Havel L, Steins M, Garassino MC, Aerts JG, Domine M, Paz-Ares L, Reck M, Baudelet C, Harbison CT, Lestini B, Spigel DR. Nivolumab versus Docetaxel in Advanced Squamous-Cell Non-Small-Cell Lung Cancer. N Engl J Med. 2015 Jul 9;373(2):123-35. doi: 10.1056/NEJMoa1504627. Epub 2015 May 31.
- Eisenhauer EA, Therasse P, Bogaerts J, Schwartz LH, Sargent D, Ford R, Dancey J, Arbuck S, Gwyther S, Mooney M, Rubinstein L, Shankar L, Dodd L, Kaplan R, Lacombe D, Verweij J. New response evaluation criteria in solid tumours: revised RECIST guideline (version 1.1). Eur J Cancer. 2009 Jan;45(2):228-47. doi: 10.1016/j.ejca.2008.10.026.
- Wolchok JD, Hoos A, O'Day S, Weber JS, Hamid O, Lebbe C, Maio M, Binder M, Bohnsack O, Nichol G, Humphrey R, Hodi FS. Guidelines for the evaluation of immune therapy activity in solid tumors: immune-related response criteria. Clin Cancer Res. 2009 Dec 1;15(23):7412-20. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-09-1624. Epub 2009 Nov 24.
- Borghaei H, Paz-Ares L, Horn L, Spigel DR, Steins M, Ready NE, Chow LQ, Vokes EE, Felip E, Holgado E, Barlesi F, Kohlhaufl M, Arrieta O, Burgio MA, Fayette J, Lena H, Poddubskaya E, Gerber DE, Gettinger SN, Rudin CM, Rizvi N, Crino L, Blumenschein GR Jr, Antonia SJ, Dorange C, Harbison CT, Graf Finckenstein F, Brahmer JR. Nivolumab versus Docetaxel in Advanced Nonsquamous Non-Small-Cell Lung Cancer. N Engl J Med. 2015 Oct 22;373(17):1627-39. doi: 10.1056/NEJMoa1507643. Epub 2015 Sep 27.
- Zou W, Chen L. Inhibitory B7-family molecules in the tumour microenvironment. Nat Rev Immunol. 2008 Jun;8(6):467-77. doi: 10.1038/nri2326.
- Gajewski TF, Schreiber H, Fu YX. Innate and adaptive immune cells in the tumor microenvironment. Nat Immunol. 2013 Oct;14(10):1014-22. doi: 10.1038/ni.2703.
- Savoldo B, Ramos CA, Liu E, Mims MP, Keating MJ, Carrum G, Kamble RT, Bollard CM, Gee AP, Mei Z, Liu H, Grilley B, Rooney CM, Heslop HE, Brenner MK, Dotti G. CD28 costimulation improves expansion and persistence of chimeric antigen receptor-modified T cells in lymphoma patients. J Clin Invest. 2011 May;121(5):1822-6. doi: 10.1172/JCI46110. Epub 2011 Apr 11.
- Kochenderfer JN, Dudley ME, Kassim SH, Somerville RP, Carpenter RO, Stetler-Stevenson M, Yang JC, Phan GQ, Hughes MS, Sherry RM, Raffeld M, Feldman S, Lu L, Li YF, Ngo LT, Goy A, Feldman T, Spaner DE, Wang ML, Chen CC, Kranick SM, Nath A, Nathan DA, Morton KE, Toomey MA, Rosenberg SA. Chemotherapy-refractory diffuse large B-cell lymphoma and indolent B-cell malignancies can be effectively treated with autologous T cells expressing an anti-CD19 chimeric antigen receptor. J Clin Oncol. 2015 Feb 20;33(6):540-9. doi: 10.1200/JCO.2014.56.2025. Epub 2014 Aug 25.
- Lee DW, Kochenderfer JN, Stetler-Stevenson M, Cui YK, Delbrook C, Feldman SA, Fry TJ, Orentas R, Sabatino M, Shah NN, Steinberg SM, Stroncek D, Tschernia N, Yuan C, Zhang H, Zhang L, Rosenberg SA, Wayne AS, Mackall CL. T cells expressing CD19 chimeric antigen receptors for acute lymphoblastic leukaemia in children and young adults: a phase 1 dose-escalation trial. Lancet. 2015 Feb 7;385(9967):517-528. doi: 10.1016/S0140-6736(14)61403-3. Epub 2014 Oct 13.
- Dunn GP, Old LJ, Schreiber RD. The immunobiology of cancer immunosurveillance and immunoediting. Immunity. 2004 Aug;21(2):137-48. doi: 10.1016/j.immuni.2004.07.017.
- Kochenderfer JN, Dudley ME, Feldman SA, Wilson WH, Spaner DE, Maric I, Stetler-Stevenson M, Phan GQ, Hughes MS, Sherry RM, Yang JC, Kammula US, Devillier L, Carpenter R, Nathan DA, Morgan RA, Laurencot C, Rosenberg SA. B-cell depletion and remissions of malignancy along with cytokine-associated toxicity in a clinical trial of anti-CD19 chimeric-antigen-receptor-transduced T cells. Blood. 2012 Mar 22;119(12):2709-20. doi: 10.1182/blood-2011-10-384388. Epub 2011 Dec 8.
- Davila ML, Riviere I, Wang X, Bartido S, Park J, Curran K, Chung SS, Stefanski J, Borquez-Ojeda O, Olszewska M, Qu J, Wasielewska T, He Q, Fink M, Shinglot H, Youssif M, Satter M, Wang Y, Hosey J, Quintanilla H, Halton E, Bernal Y, Bouhassira DC, Arcila ME, Gonen M, Roboz GJ, Maslak P, Douer D, Frattini MG, Giralt S, Sadelain M, Brentjens R. Efficacy and toxicity management of 19-28z CAR T cell therapy in B cell acute lymphoblastic leukemia. Sci Transl Med. 2014 Feb 19;6(224):224ra25. doi: 10.1126/scitranslmed.3008226.
- Landis SH, Murray T, Bolden S, Wingo PA. Cancer statistics, 1999. CA Cancer J Clin. 1999 Jan-Feb;49(1):8-31, 1. doi: 10.3322/canjclin.49.1.8.
- Novello S, Le Chevalier T. Chemotherapy for non-small-cell lung cancer. Part 1: Early-stage disease. Oncology (Williston Park). 2003 Mar;17(3):357-64.
- Ettinger DS, Wood DE, Akerley W, Bazhenova LA, Borghaei H, Camidge DR, Cheney RT, Chirieac LR, D'Amico TA, Demmy TL, Dilling TJ, Govindan R, Grannis FW Jr, Horn L, Jahan TM, Komaki R, Kris MG, Krug LM, Lackner RP, Lanuti M, Lilenbaum R, Lin J, Loo BW Jr, Martins R, Otterson GA, Patel JD, Pisters KM, Reckamp K, Riely GJ, Rohren E, Schild S, Shapiro TA, Swanson SJ, Tauer K, Yang SC, Gregory K, Hughes M. Non-small cell lung cancer, version 1.2015. J Natl Compr Canc Netw. 2014 Dec;12(12):1738-61. doi: 10.6004/jnccn.2014.0176.
- Sholl LM, Aisner DL, Varella-Garcia M, Berry LD, Dias-Santagata D, Wistuba II, Chen H, Fujimoto J, Kugler K, Franklin WA, Iafrate AJ, Ladanyi M, Kris MG, Johnson BE, Bunn PA, Minna JD, Kwiatkowski DJ; LCMC Investigators. Multi-institutional Oncogenic Driver Mutation Analysis in Lung Adenocarcinoma: The Lung Cancer Mutation Consortium Experience. J Thorac Oncol. 2015 May;10(5):768-777. doi: 10.1097/JTO.0000000000000516.
- Johnson DB, Sosman JA. Therapeutic Advances and Treatment Options in Metastatic Melanoma. JAMA Oncol. 2015 Jun;1(3):380-6. doi: 10.1001/jamaoncol.2015.0565.
- Garon EB, Rizvi NA, Hui R, Leighl N, Balmanoukian AS, Eder JP, Patnaik A, Aggarwal C, Gubens M, Horn L, Carcereny E, Ahn MJ, Felip E, Lee JS, Hellmann MD, Hamid O, Goldman JW, Soria JC, Dolled-Filhart M, Rutledge RZ, Zhang J, Lunceford JK, Rangwala R, Lubiniecki GM, Roach C, Emancipator K, Gandhi L; KEYNOTE-001 Investigators. Pembrolizumab for the treatment of non-small-cell lung cancer. N Engl J Med. 2015 May 21;372(21):2018-28. doi: 10.1056/NEJMoa1501824. Epub 2015 Apr 19.
- Barlesiet al, et al. ESMO 2016 LBA44
- Chen N, Fang W, Zhan J, Hong S, Tang Y, Kang S, Zhang Y, He X, Zhou T, Qin T, Huang Y, Yi X, Zhang L. Upregulation of PD-L1 by EGFR Activation Mediates the Immune Escape in EGFR-Driven NSCLC: Implication for Optional Immune Targeted Therapy for NSCLC Patients with EGFR Mutation. J Thorac Oncol. 2015 Jun;10(6):910-23. doi: 10.1097/JTO.0000000000000500.
- Jia M, Feng W, Kang S, Zhang Y, Shen J, He J, Jiang L, Wang W, Guo Z, Peng G, Chen G, He J, Liang W. Evaluation of the efficacy and safety of anti-PD-1 and anti-PD-L1 antibody in the treatment of non-small cell lung cancer (NSCLC): a meta-analysis. J Thorac Dis. 2015 Mar;7(3):455-61. doi: 10.3978/j.issn.2072-1439.2015.02.06.
- Carbognin L, Pilotto S, Milella M, Vaccaro V, Brunelli M, Calio A, Cuppone F, Sperduti I, Giannarelli D, Chilosi M, Bronte V, Scarpa A, Bria E, Tortora G. Differential Activity of Nivolumab, Pembrolizumab and MPDL3280A according to the Tumor Expression of Programmed Death-Ligand-1 (PD-L1): Sensitivity Analysis of Trials in Melanoma, Lung and Genitourinary Cancers. PLoS One. 2015 Jun 18;10(6):e0130142. doi: 10.1371/journal.pone.0130142. eCollection 2015.
- Whilding LM, Maher J. ErbB-targeted CAR T-cell immunotherapy of cancer. Immunotherapy. 2015;7(3):229-41. doi: 10.2217/imt.14.120.
- Brentjens RJ, Davila ML, Riviere I, Park J, Wang X, Cowell LG, Bartido S, Stefanski J, Taylor C, Olszewska M, Borquez-Ojeda O, Qu J, Wasielewska T, He Q, Bernal Y, Rijo IV, Hedvat C, Kobos R, Curran K, Steinherz P, Jurcic J, Rosenblat T, Maslak P, Frattini M, Sadelain M. CD19-targeted T cells rapidly induce molecular remissions in adults with chemotherapy-refractory acute lymphoblastic leukemia. Sci Transl Med. 2013 Mar 20;5(177):177ra38. doi: 10.1126/scitranslmed.3005930.
- Louis CU, Savoldo B, Dotti G, Pule M, Yvon E, Myers GD, Rossig C, Russell HV, Diouf O, Liu E, Liu H, Wu MF, Gee AP, Mei Z, Rooney CM, Heslop HE, Brenner MK. Antitumor activity and long-term fate of chimeric antigen receptor-positive T cells in patients with neuroblastoma. Blood. 2011 Dec 1;118(23):6050-6. doi: 10.1182/blood-2011-05-354449. Epub 2011 Oct 7.
- Lamers CH, Sleijfer S, van Steenbergen S, van Elzakker P, van Krimpen B, Groot C, Vulto A, den Bakker M, Oosterwijk E, Debets R, Gratama JW. Treatment of metastatic renal cell carcinoma with CAIX CAR-engineered T cells: clinical evaluation and management of on-target toxicity. Mol Ther. 2013 Apr;21(4):904-12. doi: 10.1038/mt.2013.17. Epub 2013 Feb 19.
- Saied A, Licata L, Burga RA, Thorn M, McCormack E, Stainken BF, Assanah EO, Khare PD, Davies R, Espat NJ, Junghans RP, Katz SC. Neutrophil:lymphocyte ratios and serum cytokine changes after hepatic artery chimeric antigen receptor-modified T-cell infusions for liver metastases. Cancer Gene Ther. 2014 Nov;21(11):457-62. doi: 10.1038/cgt.2014.50. Epub 2014 Oct 3.
- Gross G, Waks T, Eshhar Z. Expression of immunoglobulin-T-cell receptor chimeric molecules as functional receptors with antibody-type specificity. Proc Natl Acad Sci U S A. 1989 Dec;86(24):10024-8. doi: 10.1073/pnas.86.24.10024.
- Eshhar Z, Waks T, Gross G, Schindler DG. Specific activation and targeting of cytotoxic lymphocytes through chimeric single chains consisting of antibody-binding domains and the gamma or zeta subunits of the immunoglobulin and T-cell receptors. Proc Natl Acad Sci U S A. 1993 Jan 15;90(2):720-4. doi: 10.1073/pnas.90.2.720.
- Porter DL, Levine BL, Kalos M, Bagg A, June CH. Chimeric antigen receptor-modified T cells in chronic lymphoid leukemia. N Engl J Med. 2011 Aug 25;365(8):725-33. doi: 10.1056/NEJMoa1103849. Epub 2011 Aug 10. Erratum In: N Engl J Med. 2016 Mar 10;374(10):998.
- Milone MC, Fish JD, Carpenito C, Carroll RG, Binder GK, Teachey D, Samanta M, Lakhal M, Gloss B, Danet-Desnoyers G, Campana D, Riley JL, Grupp SA, June CH. Chimeric receptors containing CD137 signal transduction domains mediate enhanced survival of T cells and increased antileukemic efficacy in vivo. Mol Ther. 2009 Aug;17(8):1453-64. doi: 10.1038/mt.2009.83. Epub 2009 Apr 21. Erratum In: Mol Ther. 2015 Jul;23(7):1278.
- June CH, Riddell SR, Schumacher TN. Adoptive cellular therapy: a race to the finish line. Sci Transl Med. 2015 Mar 25;7(280):280ps7. doi: 10.1126/scitranslmed.aaa3643.
- Morgan RA, Yang JC, Kitano M, Dudley ME, Laurencot CM, Rosenberg SA. Case report of a serious adverse event following the administration of T cells transduced with a chimeric antigen receptor recognizing ERBB2. Mol Ther. 2010 Apr;18(4):843-51. doi: 10.1038/mt.2010.24. Epub 2010 Feb 23.
- Kamphorst AO, Ahmed R. Manipulating the PD-1 pathway to improve immunity. Curr Opin Immunol. 2013 Jun;25(3):381-8. doi: 10.1016/j.coi.2013.03.003. Epub 2013 Apr 9.
- Dai S, Jia R, Zhang X, Fang Q, Huang L. The PD-1/PD-Ls pathway and autoimmune diseases. Cell Immunol. 2014 Jul;290(1):72-9. doi: 10.1016/j.cellimm.2014.05.006. Epub 2014 May 27.
- Kataoka K, Shiraishi Y, Takeda Y, Sakata S, Matsumoto M, Nagano S, Maeda T, Nagata Y, Kitanaka A, Mizuno S, Tanaka H, Chiba K, Ito S, Watatani Y, Kakiuchi N, Suzuki H, Yoshizato T, Yoshida K, Sanada M, Itonaga H, Imaizumi Y, Totoki Y, Munakata W, Nakamura H, Hama N, Shide K, Kubuki Y, Hidaka T, Kameda T, Masuda K, Minato N, Kashiwase K, Izutsu K, Takaori-Kondo A, Miyazaki Y, Takahashi S, Shibata T, Kawamoto H, Akatsuka Y, Shimoda K, Takeuchi K, Seya T, Miyano S, Ogawa S. Aberrant PD-L1 expression through 3'-UTR disruption in multiple cancers. Nature. 2016 Jun 16;534(7607):402-6. doi: 10.1038/nature18294. Epub 2016 May 23.
- Casey SC, Tong L, Li Y, Do R, Walz S, Fitzgerald KN, Gouw AM, Baylot V, Gutgemann I, Eilers M, Felsher DW. MYC regulates the antitumor immune response through CD47 and PD-L1. Science. 2016 Apr 8;352(6282):227-31. doi: 10.1126/science.aac9935. Epub 2016 Mar 10. Erratum In: Science. 2016 Apr 8;352(6282). pii: aaf7984. doi: 10.1126/science.aaf7984.
- Thompson RH, Dong H, Lohse CM, Leibovich BC, Blute ML, Cheville JC, Kwon ED. PD-1 is expressed by tumor-infiltrating immune cells and is associated with poor outcome for patients with renal cell carcinoma. Clin Cancer Res. 2007 Mar 15;13(6):1757-61. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-06-2599.
- Herbst RS, Soria JC, Kowanetz M, Fine GD, Hamid O, Gordon MS, Sosman JA, McDermott DF, Powderly JD, Gettinger SN, Kohrt HE, Horn L, Lawrence DP, Rost S, Leabman M, Xiao Y, Mokatrin A, Koeppen H, Hegde PS, Mellman I, Chen DS, Hodi FS. Predictive correlates of response to the anti-PD-L1 antibody MPDL3280A in cancer patients. Nature. 2014 Nov 27;515(7528):563-7. doi: 10.1038/nature14011.
- Postow MA, Callahan MK, Wolchok JD. Immune Checkpoint Blockade in Cancer Therapy. J Clin Oncol. 2015 Jun 10;33(17):1974-82. doi: 10.1200/JCO.2014.59.4358. Epub 2015 Jan 20.
- Riley JL, June CH. The CD28 family: a T-cell rheostat for therapeutic control of T-cell activation. Blood. 2005 Jan 1;105(1):13-21. doi: 10.1182/blood-2004-04-1596. Epub 2004 Sep 7.
- Posey AD Jr, Schwab RD, Boesteanu AC, Steentoft C, Mandel U, Engels B, Stone JD, Madsen TD, Schreiber K, Haines KM, Cogdill AP, Chen TJ, Song D, Scholler J, Kranz DM, Feldman MD, Young R, Keith B, Schreiber H, Clausen H, Johnson LA, June CH. Engineered CAR T Cells Targeting the Cancer-Associated Tn-Glycoform of the Membrane Mucin MUC1 Control Adenocarcinoma. Immunity. 2016 Jun 21;44(6):1444-54. doi: 10.1016/j.immuni.2016.05.014.
- Chen F, Teachey DT, Pequignot E, Frey N, Porter D, Maude SL, Grupp SA, June CH, Melenhorst JJ, Lacey SF. Measuring IL-6 and sIL-6R in serum from patients treated with tocilizumab and/or siltuximab following CAR T cell therapy. J Immunol Methods. 2016 Jul;434:1-8. doi: 10.1016/j.jim.2016.03.005. Epub 2016 Apr 3.
- Zhao J, Xiong J. [Advances on driver oncogenes of non-small cell lung cancer]. Zhongguo Fei Ai Za Zhi. 2015 Jan;18(1):42-7. doi: 10.3779/j.issn.1009-3419.2015.01.07. Chinese.
연구 기록 날짜
연구 주요 날짜
연구 시작 (실제)
기본 완료 (실제)
연구 완료 (실제)
연구 등록 날짜
최초 제출
QC 기준을 충족하는 최초 제출
처음 게시됨 (실제)
연구 기록 업데이트
마지막 업데이트 게시됨 (실제)
QC 기준을 충족하는 마지막 업데이트 제출
마지막으로 확인됨
추가 정보
이 정보는 변경 없이 clinicaltrials.gov 웹사이트에서 직접 가져온 것입니다. 귀하의 연구 세부 정보를 변경, 제거 또는 업데이트하도록 요청하는 경우 register@clinicaltrials.gov. 문의하십시오. 변경 사항이 clinicaltrials.gov에 구현되는 즉시 저희 웹사이트에도 자동으로 업데이트됩니다. .
진행성 폐암에 대한 임상 시험
-
Georgetown UniversityNational Cancer Institute (NCI); American Cancer Society, Inc.; Susan G. Komen Breast Cancer...완전한
-
University of UtahNational Cancer Institute (NCI)모병피로 | 좌식 생활 | 전이성 전립선암 | IV기 전립선암 AJCC(American Joint Committee on Cancer) v8 | IVA기 전립선암 AJCC(American Joint Committee on Cancer) v8 | IVB기 전립선암 AJCC(American Joint Committee on Cancer) v8미국
-
Töölö HospitalTurku University Hospital; Tampere University Hospital; Jyväskylä Central Hospital; Kymenlaakso...모병
-
Novartis Pharmaceuticals완전한신경내분비종양 | GI 오리진의 고급 NET | 고급 NET of Lung Origin미국, 콜롬비아, 이탈리아, 대만, 영국, 벨기에, 체코, 독일, 일본, 사우디 아라비아, 캐나다, 네덜란드, 스페인, 대한민국, 레바논, 오스트리아, 중국, 그리스, 남아프리카, 태국, 헝가리, 칠면조, 폴란드, 슬로바키아, 러시아 연방
-
Advanced Bionics완전한심한 청력 손실 | Advanced Bionics HiResolution™ Bionic Ear System의 성인 사용자미국
-
University of AlbertaArthritis Society Canada; Wrist Evaluation Canada (WECAN)모병관절염 | 관절 질환 | 근골격계 질환 | 외상 후; 관절염 | 손목 관절염 | 주상골 불유합 | Scapholunate Advanced Collapse | 손목 관절병증캐나다
-
Extremity Medical모병골관절염 | 염증성 관절염 | 손목 터널 증후군(CTS) | 외상 후 관절염 | SLAC(Scapholunate Advanced Collapse) | Scapholunate Crystalline Advanced Collapse(SCAC) | 주상골, 사다리꼴 및 사다리꼴 고급 붕괴(STTAC) | Kienbock의 성인병 | 방사형 부정합 | 척골 전좌 | 주상골 불유합 진행성 허탈(SNAC)미국
-
Jonsson Comprehensive Cancer Center아직 모집하지 않음전립선암 | IVB기 전립선암 American Joint Committee on Cancer(AJCC) v8미국
-
Rashmi Verma, MDNational Cancer Institute (NCI)모병거세저항성 전립선암 | 전이성 전립선 선암종 | IVB기 전립선암 American Joint Committee on Cancer(AJCC) v8미국
-
Jonsson Comprehensive Cancer Center빼는전립선 선암종 | 2기 전립선암 AJCC v8 | IIC기 전립선암 AJCC v8 | IIA기 전립선암 AJCC v8 | IIB기 전립선암 AJCC v8 | 1기 전립선암 American Joint Committee on Cancer(AJCC) v8미국