Ta strona została przetłumaczona automatycznie i dokładność tłumaczenia nie jest gwarantowana. Proszę odnieść się do angielska wersja za tekst źródłowy.

Wpływ autogennego przeszczepu zębiny na zachowanie zębodołu

16 października 2019 zaktualizowane przez: Ezgi Yüceer Çetiner, Bahçeşehir University

Gojenie zębodołów poekstrakcyjnych zachowanych za pomocą autogennego przeszczepu zębiny: badanie kliniczne, histologiczne, histomorfometryczne i mikroskopii elektronowej

Do odbudowy ubytków kostnych w szczękach, powstałych w wyniku utraty zębów, urazów, zaawansowanych chorób przyzębia, zmian patologicznych i wad wrodzonych, stosuje się różne materiały przeszczepowe. Główne cechy idealnego przeszczepu kostnego to osteogeneza, osteoindukcja i osteokondukcja. Autogenny przeszczep kostny jest uważany za złoty standard wśród wszystkich materiałów do przeszczepów kostnych. Bo ma wszystkie cechy, jakie powinien mieć idealny przeszczep kostny. Istnieją jednak pewne wady, takie jak zachorowalność w miejscu pobrania, uzyskiwanie ograniczonych ilości i wysokie wskaźniki resorpcji. Ze względu na te wady, do augmentacji kości często stosuje się inne materiały do ​​przeszczepów kostnych, takie jak alloprzeszczepy, ksenoprzeszczepy i alloplastyczne przeszczepy kostne. W świetle ostatnich badań wyraźnie wykazano ograniczenia konwencjonalnych materiałów do przeszczepów kostnych, takie jak ograniczona zdolność osteokondukcji i przenoszenie chorób. Ze względu na wady tych materiałów badania ukierunkowane są na opracowanie alternatywnych materiałów przeszczepowych. Celem pracy jest analiza wpływu autogennego przeszczepu zębiny oraz mieszaniny autogennego przeszczepu zębiny i fibryny bogatopłytkowej (PRF) zastosowanej do zębodołu poekstrakcyjnego na proces gojenia się kości. W badaniu oceniono łącznie 57 zębodołów poekstrakcyjnych u 9 pacjentów, u których po ekstrakcji zęba planowano leczenie implantologiczne. Zęby ekstrakcyjne podzielono losowo na 3 grupy. W pierwszej grupie zębodoły wypełniono autogennym przeszczepem zębinowym (Grupa D-20 zębodoły). W drugiej grupie zębodoły wypełniono mieszanką PRF i zębiny autogenicznej (Grupa DP-21 zębodoły). W grupie trzeciej gniazda pozostawiono puste jako grupę kontrolną (gniazda Grupy C-16). Po 3 miesiącach dokonano oceny histologicznej i immunohistochemicznej próbek pobranych podczas zabiegu implantacji. Dodatkowo próbki pobrane z każdej grupy badano metodą skaningowego mikroskopu elektronowego (SEM).

Przegląd badań

Typ studiów

Interwencyjne

Zapisy (Rzeczywisty)

9

Faza

  • Faza 4

Kryteria uczestnictwa

Badacze szukają osób, które pasują do określonego opisu, zwanego kryteriami kwalifikacyjnymi. Niektóre przykłady tych kryteriów to ogólny stan zdrowia danej osoby lub wcześniejsze leczenie.

Kryteria kwalifikacji

Wiek uprawniający do nauki

18 lat i starsze (DOROSŁY, STARSZY_DOROŚLI)

Akceptuje zdrowych ochotników

Tak

Płeć kwalifikująca się do nauki

Wszystko

Opis

Kryteria przyjęcia:

  • Wiek ≥18 lat,
  • Chorzy ogólnoustrojowo zdrowi (ASA I i II),
  • Odpowiednia przestrzeń odbudowy dla odbudowy osadzonej na implantach.

Kryteria wyłączenia:

  • Zęby z głęboką próchnicą lub wypełnieniem kanałów korzeniowych,
  • Pacjenci z powikłaniami układowymi (ASA III, IV, V),
  • Obecność ostrej infekcji,
  • Ciąża lub laktacja,
  • Niechęć do powrotu na kolejne okresy

Plan studiów

Ta sekcja zawiera szczegółowe informacje na temat planu badania, w tym sposób zaprojektowania badania i jego pomiary.

Jak projektuje się badanie?

Szczegóły projektu

  • Główny cel: LECZENIE
  • Przydział: LOSOWO
  • Model interwencyjny: RÓWNOLEGŁY
  • Maskowanie: NIC

Broń i interwencje

Grupa uczestników / Arm
Interwencja / Leczenie
NIE_INTERWENCJA: Kontrola
Zęby ekstrakcyjne z gojeniem samoistnym (16 zębodołów).
ACTIVE_COMPARATOR: Zębina
Zęby poekstrakcyjne wypełniono niezdemineralizowanym autogennym przeszczepem zębiny (20 zębodołów).
ACTIVE_COMPARATOR: Zębina+PRF
Zęby poekstrakcyjne wypełniono mieszanką niezdemineralizowanej autogennej zębiny i fibryny bogatopłytkowej (PRF) (21 zębodołów).

Co mierzy badanie?

Podstawowe miary wyniku

Miara wyniku
Opis środka
Ramy czasowe
Ocena histopatologiczna
Ramy czasowe: 3 miesiące po zabiegu augmentacji
Próbki otrzymane z grup utrwalano w 10% roztworze formaliny i odwapniano w 5% roztworze kwasu mrówkowego. Próbki stopniowo odwadniano w serii etanolu, umieszczano w ksylenie w celu klarowania, a następnie zatapiano w parafinie. Bloki tkankowe pocięto na skrawki 5 urn na mikrotomie obrotowym (Leica RM 2125RT, Nussloch, Niemcy). Skrawki przechowywano przez noc w temperaturze 60°C w celu odparafinowania. Następnie proces odparafinowania zakończono szeregiem ksylenowym. Postępując zgodnie z tą procedurą skrawki przepuszczano z szeregu alkoholowego i odwadniano. Po odparafinowaniu wszystkie skrawki barwiono metodą barwienia hematoksyliną-eozyną. Z każdej próbki pobrano pięć skrawków i wykorzystano do oceny histopatologicznej. Zdjęcia wykonano ze wszystkich sekcji w powiększeniu X4, X10 i X20 przy użyciu mikroskopu świetlnego (Olympus BX43, Center Valley, PA) z przystawką do kamery. Objętość nowej kości, tkanki łącznej, przeszczepu i naczyń krwionośnych oceniono metodą oceny histopatologicznej.
3 miesiące po zabiegu augmentacji
Ocena immunohistochemiczna
Ramy czasowe: 3 miesiące po zabiegu augmentacji
Z każdej próbki pobrano skrawki (5 µm) i zakończono odparafinowanie. Do przeprowadzenia reakcji zastosowano zestaw IHC do wykrywania specyficznych dla myszy i królików HRP/AEC (ABC) (Abcam, USA). Po tym procesie skrawki eksponowano aż do zmiany koloru w celu ukazania reakcji immunologicznej w tkance i krótko barwiono kontrastowo hematoksyliną Mayera. Zastosowano przeciwciała anty-BMP-2 i anty-RUNX-2 (Abcam, USA). Na koniec skrawki przemyto wodą destylowaną, a następnie przykryto pożywką immunologiczną. Zdjęcia wykonano w powiększeniu X4, X10, X20 przy użyciu mikroskopu świetlnego (Olympus BX43, Center Valley, PA) z przystawką do aparatu (Carl Zeiss, Niemcy).
3 miesiące po zabiegu augmentacji
Ocena za pomocą skaningowej mikroskopii elektronowej (SEM).
Ramy czasowe: 3 miesiące po zabiegu augmentacji
Po procesie suszenia 4 próbki z każdej grupy pokryto warstwą złota-palladu o grubości 10 nm przy użyciu urządzenia do powlekania (Balzers-SCd 050, Niemcy). Próbki analizowano przy 10 kV za pomocą urządzenia SEM (JSM-7001 F, JEOL, Tokio, Japonia) w celu zbadania tworzenia się powierzchni. Dla każdej grupy wykonano zdjęcie przy powiększeniu X2000, X5000 i X10 000.
3 miesiące po zabiegu augmentacji

Współpracownicy i badacze

Tutaj znajdziesz osoby i organizacje zaangażowane w to badanie.

Daty zapisu na studia

Daty te śledzą postęp w przesyłaniu rekordów badań i podsumowań wyników do ClinicalTrials.gov. Zapisy badań i zgłoszone wyniki są przeglądane przez National Library of Medicine (NLM), aby upewnić się, że spełniają określone standardy kontroli jakości, zanim zostaną opublikowane na publicznej stronie internetowej.

Główne daty studiów

Rozpoczęcie studiów (RZECZYWISTY)

5 grudnia 2016

Zakończenie podstawowe (RZECZYWISTY)

30 kwietnia 2018

Ukończenie studiów (RZECZYWISTY)

27 sierpnia 2018

Daty rejestracji na studia

Pierwszy przesłany

15 października 2019

Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości

16 października 2019

Pierwszy wysłany (RZECZYWISTY)

18 października 2019

Aktualizacje rekordów badań

Ostatnia wysłana aktualizacja (RZECZYWISTY)

18 października 2019

Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości

16 października 2019

Ostatnia weryfikacja

1 października 2019

Więcej informacji

Terminy związane z tym badaniem

Inne numery identyfikacyjne badania

  • 71146310 [2015-AC-CE-42]

Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .

Badania kliniczne na Regeneracja kości

Badania kliniczne na autogenny przeszczep zębiny

3
Subskrybuj