Białko, wapń i wydzielanie hormonów jelitowych (PROCAL2)

Niedawne prace przeprowadzone na University of Bath wykazały, że po spożyciu z 50 g hydrolizatu białka serwatki, Capolac® (minerały mleka bogate w wapń) silnie stymuluje dostępność ważnego hormonu, glukagonopodobnego peptydu-1 (GLP-1). Jednak obecnie nie jest jasne, w jaki sposób forma spożywanego białka z obecnością lub brakiem wapnia może wpływać na wydzielanie hormonów jelitowych i opróżnianie żołądka. Dlatego naszym celem jest przeprowadzenie badania nad wpływem jednoczesnego spożywania dwóch różnych form białka w obecności lub przy braku wapnia na dostępność hormonów jelitowych i opróżnianie żołądka. Projekt ten pomoże w dostarczeniu kluczowych dowodów, które pomogą w przyszłych pracach i zaleceniach dotyczących interwencji opartych na żywieniu w celu zapobiegania i leczenia otyłości i cukrzycy typu 2.

Piętnastu metabolicznie zdrowych mężczyzn i kobiet w wieku 18-65 lat, BMI między 18,5 a 25 kg/m2 zostanie zrekrutowanych do udziału w randomizowanym badaniu krzyżowym. Każdy uczestnik przejdzie 4 próby. Każda próba potrwa ~3 godziny i będzie oddzielona co najmniej 48h:

KONTROLA (CON) - 30 g Tylko białko kontrolne KONTROLA + WAPŃ (CON-C) - 30 g Białko kontrolne + 9547 mg Capolac® (2500 mg spożytego wapnia) BIAŁKO (PRO) - 30 g Tylko agregaty białkowe BIAŁKO + WAPŃ (PRO) -C) - 30 g agregatu białkowego + 9547 mg Capolac® (2500 mg spożytego wapnia)

Każdy z tych napojów będzie również zawierał 500 ml wody, niskokaloryczny środek słodzący (80 mg sukralozy) i będzie oznaczony 150 mg octanu sodu 13C1 i 100 mg oktanianu sodu 13C1 do pomiaru opróżniania żołądka.

Uczestnicy zostaną poproszeni o przybycie do laboratorium w godzinach od 09:00 do 10:00 po niejedzeniu przez 10-14 godzin, tj. na czczo (dozwolone i zalecane jest picie wody). Po przybyciu do laboratorium wyszkolony członek personelu flebotomisty wprowadzi kaniulę (mała plastikowa rurka) do wstępnie ogrzanej żyły grzbietowej dłoni lub, jeśli to się nie powiedzie, do żyły przedłokciowej. Następnie uczestnicy otrzymają jeden z czterech napojów testowych, który po spożyciu zainicjuje próbę. Zaraz po spożyciu napoju testowego poprosimy uczestników o wypełnienie skali smakowitości.

Próbki krwi zostaną pobrane na początku badania oraz 15, 30, 45, 60, 90 i 120 minut po spożyciu napoju testowego. Próbki oddechu będą pobierane w exetainerach na początku badania i co 5 minut aż do 120-minutowego punktu czasowego w celu określenia opróżniania żołądka. Kwestionariusz apetytu zostanie również wypełniony na początku badania i co 60 minut po spożyciu napoju testowego w celu oceny odczuć związanych z apetytem. Po 120-minutowym punkcie czasowym uczestnicy zostaną poproszeni o zjedzenie posiłku obiadowego, dopóki nie będą komfortowo syci. Po usatysfakcjonowaniu z obiadu wypełnią końcowy kwestionariusz dotyczący apetytu. Dzień próbny dobiegnie wtedy końca. Po zakończeniu badania uczestnicy zostaną poproszeni o wypełnienie kwestionariusza dotyczącego ograniczeń w jedzeniu.

Podgrupa 5 uczestników zostanie wyposażona w sondę nosowo-żołądkową przez wykwalifikowaną pielęgniarkę BAPEN. 5 ml aspiratu z żołądka będzie próbkami na linii podstawowej, po 30, 60 i 120 minutach, które zostaną równo rozdzielone do profilowania analitów i hodowli in vitro. 3 ml aspiratu żołądkowego zostanie użyte do stymulacji linii komórkowej GLUTag. Eksperymenty zostaną przeprowadzone poprzez inkubację komórek ze zobojętnioną aspiratem żołądkowym w 250 µl Krebs Ringer Buffer (KRB) przez 2 hw 37˚C, 5% CO2. Zostanie przeprowadzona druga hodowla, identyczna z poprzednio opisaną, tylko z dodatkiem specyficznych antagonistów receptorów komórkowych.