- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT05241444
CD4^LVFOXP3 bei Teilnehmern mit IPEX
Phase-1-Studie zu autologem CD4^LVFOXP3 bei Teilnehmern mit Immundysregulations-Polyendokrinopathie-Enteropathie-X-chromosomalem (IPEX)-Syndrom
Studienübersicht
Detaillierte Beschreibung
Es wird erwartet, dass die Behandlung mit CD4^LVFOXP3 die defekten Treg-Zellen der Teilnehmer ersetzt und die Kontrolle über das Immunsystem wiederherstellt und somit die Symptome von IPEX lindert.
Wir erwarten, dass wir aus dieser Studie Folgendes lernen:
- Dass CD4^LVFOXP3 konsistent hergestellt werden kann und die für die Verwendung beim Menschen erwartete Qualität aufweist,
- Dass CD4^LVFOXP3 bei Kindern und jungen Erwachsenen mit IPEX sicher sind und seine positiven und negativen Auswirkungen bestimmen,
- Dass CD4^LVFOXP3 die allgemeine Gesundheit verbessern und eine Reduzierung der Medikation/en ermöglichen kann.
Diese Phase-1-Studie (Durchführbarkeit und Sicherheit) wird Daten über die In-vivo-Persistenz von CD4^LVFOXP3 und frühe Anzeichen einer Auswirkung auf die Symptome von IPEX sammeln.
Studientyp
Einschreibung (Voraussichtlich)
Phase
- Phase 1
Kontakte und Standorte
Studienkontakt
- Name: Rosa Bacchetta, MD
- Telefonnummer: 650-498-8369
- E-Mail: rosab@stanford.edu
Studienorte
-
-
California
-
Palo Alto, California, Vereinigte Staaten, 94305
- Rekrutierung
- Lucile Packard Children's Hospital
-
Unterermittler:
- Orly Klein, MD
-
Kontakt:
- SCGT Clinical Trials Program
- E-Mail: DL-SCTIntakeCoordinators@stanfordchildrens.org
-
-
Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Körpergewicht über 8 kg, es sei denn, es wurde festgestellt, dass es Leukapherese verträgt
- FOXP3-Genmutation
- Anamnese von fortschreitenden Symptomen von IPEX mit Persistenz einiger Symptome und/oder Anzeichen, die immer noch eine immunsuppressive Medikation erfordern
- Unkontrollierte IPEX-Krankheit, aber Unverträglichkeit von immunsuppressiven Medikamenten
- Wiederkehrende IPEX-Symptome, die immunsuppressive Medikamente erfordern, bei Teilnehmern, die zuvor eine allogene (allo) Blutstammzelltransplantation (HSCT) hatten
- ≥ 50 % Leistungsbewertung auf der Lansky/Karnofsky-Skala
- Organ- und Markfunktion innerhalb akzeptabler Funktionsniveaus
- Fehlen laufender Infektionen
- Muss in der Lage sein zuzustimmen, wenn ein Erwachsener
Ausschlusskriterien:
- Medizinische Instabilität
- Weniger als 6 Monate Lebenserwartung
- Unfähigkeit, die Grenzwerte für die Steroiddosierung einzuhalten
- Berechtigt für eine Transplantation von Blutstammzellen eines HLA-übereinstimmenden Geschwisters oder eines nicht verwandten Spenders und bereit sein, sich einer Transplantation zu unterziehen.
- Unabhängige oder komorbide Herz-, Nieren-, Lungen-, Leber- oder hämatologische Erkrankung
- Allergie gegen Studienmedikamente, -produkte oder -interventionen
- Erhält derzeit eine andere experimentelle Behandlung
- Bösartige Vorgeschichte, es sei denn, seit mindestens 2 Jahren krankheitsfrei, mit Ausnahme von hellem Hautkrebs oder Carcinoma in situ (z. B. Gebärmutterhals, Blase, Brust)
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Behandlung
- Zuteilung: Nicht randomisiert
- Interventionsmodell: Sequenzielle Zuweisung
- Maskierung: Keine (Offenes Etikett)
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
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Experimental: Kohorte A (≥12 Jahre)
Dem ersten Teilnehmer in Dosisstufe 1 werden 1,0 x 10^6 CD4^LVFOXP3/kg (± 20 %) verabreicht. Wenn beim ersten Teilnehmer keine Toxizität beobachtet wird, wird den folgenden Teilnehmern in Dosisstufe 1 die gleiche Dosis von 1,0 x 10^6 CD4^LVFOXP3/kg (± 20 %) verabreicht. Wenn bei keinem der Teilnehmer in Dosisstufe 1 Toxizität beobachtet wird, werden die Teilnehmer in Dosisstufe 2 aufgenommen und erhalten 3 x 10^6 CD4^LVFOXP3/kg (± 20 %). Wenn bei keinem der Teilnehmer in Dosisstufe 2 Toxizität beobachtet wird, werden die Teilnehmer in Dosisstufe 3 aufgenommen und erhalten 10 x 10^6 CD4^LVFOXP3/kg (± 20 %). Wenn bei einer Dosisstufe 1 von 2 Teilnehmern Toxizität zeigt, wird diese Dosisstufe auf 6 Teilnehmer erweitert. |
Infusion von autologen CD4+ T-Zellen, die einen lentiviral vermittelten Gentransfer durchlaufen haben von: i) gesundes menschliches FOXP3-Gen, das zu einer anhaltend hohen FOXP3-Expression und dem Erwerb einer Treg-ähnlichen Zellfunktion führt; und ii) menschliches CD271-Oberflächenmarkergen, das die Verfolgung und Quantifizierung von CD4^LVFOXP3 im Blut ermöglicht.
Andere Namen:
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Experimental: Kohorte B (<12 Jahre)
Teilnehmer in Kohorte B werden immer die Behandlung von Teilnehmern in Kohorte A mit der gleichen Dosisstufe fortsetzen. Dem ersten Teilnehmer in Dosisstufe 1 werden 1,0 x 10^6 CD4^LVFOXP3/kg (± 20 %) verabreicht. Wenn beim ersten Teilnehmer keine Toxizität beobachtet wird, wird den folgenden Teilnehmern in Dosisstufe 1 die gleiche Dosis von 1,0 x 10^6 CD4^LVFOXP3/kg (± 20 %) verabreicht. Wenn bei keinem der Teilnehmer in Dosisstufe 1 Toxizität beobachtet wird, werden die Teilnehmer in Dosisstufe 2 aufgenommen und erhalten 3 x 10^6 CD4^LVFOXP3/kg (± 20 %). Wenn bei keinem der Teilnehmer in Dosisstufe 2 Toxizität beobachtet wird, werden die Teilnehmer in Dosisstufe 3 aufgenommen und erhalten 10 x 10^6 CD4^LVFOXP3/kg (± 20 %). Wenn bei einer Dosisstufe 1 von 2 Teilnehmern Toxizität zeigt, wird diese Dosisstufe auf 6 Teilnehmer erweitert. |
Infusion von autologen CD4+ T-Zellen, die einen lentiviral vermittelten Gentransfer durchlaufen haben von: i) gesundes menschliches FOXP3-Gen, das zu einer anhaltend hohen FOXP3-Expression und dem Erwerb einer Treg-ähnlichen Zellfunktion führt; und ii) menschliches CD271-Oberflächenmarkergen, das die Verfolgung und Quantifizierung von CD4^LVFOXP3 im Blut ermöglicht.
Andere Namen:
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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Treffen Sie die Zielzellzahl für die Dosisherstellung
Zeitfenster: Zeitpunkt der Freigabe aus der Herstellung (bis Tag 0 [Infusionstag] für jeden Teilnehmer)
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Produktion von 3 von 4 oder 4 von 6 Zellprodukten, die die Zielzelldosis und die etablierten Freisetzungskriterien erfüllen.
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Zeitpunkt der Freigabe aus der Herstellung (bis Tag 0 [Infusionstag] für jeden Teilnehmer)
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Finden Sie die sichere maximal tolerierte Dosis
Zeitfenster: Bis zu 60 Tage nach der Infusion für jeden Teilnehmer
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Nicht mehr als 1 von 6 Teilnehmern kann eine damit verbundene dosislimitierende Toxizität oder behandlungsbedingte unerwünschte Ereignisse erfahren.
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Bis zu 60 Tage nach der Infusion für jeden Teilnehmer
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Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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Änderung der Inzidenz von Durchfall
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3), Prä-Infusion bis Post-Infusion (täglich für den ersten Monat, gefolgt von monatlich in Monat 2, 3, 6, 9, 12)
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Aufzeichnungen im Stuhltagebuch – Ausmaß des Durchfalls, gemessen anhand der Häufigkeit und Menge des Stuhlgangs, des Vorhandenseins oder Fehlens von Blut und/oder Schleim sowie Stuhluntersuchungen zu bestimmten Zeitpunkten (für alle Altersgruppen).
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Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3), Prä-Infusion bis Post-Infusion (täglich für den ersten Monat, gefolgt von monatlich in Monat 2, 3, 6, 9, 12)
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Veränderung der GI-Symptome – Bewertungsskala für gastrointestinale Symptome
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3) bis nach der Infusion (Woche 4, Monat 6, Monat 12)
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Gastrointestinal Symptoms Rating Scale (GSRS) (für Patienten ≥ 12 Jahre).
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Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3) bis nach der Infusion (Woche 4, Monat 6, Monat 12)
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Veränderung des Body-Mass-Index (BMI)
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 1, 2, 3, Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9, 12)
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BMI gemessen in kg/m^2.
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Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 1, 2, 3, Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9, 12)
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Veränderung der altersspezifischen Perzentile der Körpergröße
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3) bis nach der Infusion (Monat 12)
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Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3) bis nach der Infusion (Monat 12)
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Veränderung der altersspezifischen Perzentile des Körpergewichts
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 1, 2, 3, Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9, 12)
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Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 1, 2, 3, Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9, 12)
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Veränderung des Bilirubinspiegels
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 2, Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9 und 12)
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Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 2, Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9 und 12)
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Veränderung des Leberenzyms - Alanin-Transaminase (ALT)
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 2, Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9 und 12)
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Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 2, Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9 und 12)
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Veränderung des Leberenzyms - Aspartat-Transaminase (AST)
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 2, Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9 und 12)
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Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 2, Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9 und 12)
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Veränderung des Leberenzyms - Alkalische Phosphatase (ALP)
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 2, Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9 und 12)
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Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 2, Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9 und 12)
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Veränderung des Leberenzyms - Gamma-Glutyltranspeptidase (GGT)
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 2, Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9 und 12)
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Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 2, Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9 und 12)
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Änderung des INR-Niveaus
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3) bis nach der Infusion (Woche 4; Monat 3, 6, 12)
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International normalisierte Ratio (INR) zur Bestimmung der Prothrombinzeit.
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Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3) bis nach der Infusion (Woche 4; Monat 3, 6, 12)
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Hautkrankheit (EASI) – Änderungen gegenüber dem Ausgangswert/vor der Infusion
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3), bis nach der Infusion (Tag 1; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 3, 6 und 12)
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Bewertung der betroffenen Bereiche in jeder anatomischen Region (Area), Berechnung der Intensität anhand des Eczema Area and Severity Index (EASI).
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Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3), bis nach der Infusion (Tag 1; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 3, 6 und 12)
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Hautkrankheit (POEM) – Änderungen gegenüber dem Ausgangswert/vor der Infusion
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3), bis nach der Infusion (Tag 1; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 3, 6 und 12)
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Bewertung der betroffenen Bereiche in jeder anatomischen Region (Bereich), Berechnung der Intensität mithilfe des patientenorientierten Ekzemmaßes (POEM).
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Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3), bis nach der Infusion (Tag 1; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 3, 6 und 12)
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Hautkrankheit (PASI) – Änderungen gegenüber dem Ausgangswert/vor der Infusion
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3), bis nach der Infusion (Tag 1; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 3, 6 und 12)
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Veränderungen im Ausmaß (%) und Schweregrad von Hautläsionen und deren Komplikationen (d. h.
Infektionen, Atrophie, Juckreiz) unter Verwendung des Psoriasis Area and Severity Index (PASI).
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Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3), bis nach der Infusion (Tag 1; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 3, 6 und 12)
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Hautkrankheit (MTLSS) – Änderungen gegenüber dem Ausgangswert/vor der Infusion
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3), bis nach der Infusion (Tag 1; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 3, 6 und 12)
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Veränderungen im Ausmaß (%) und Schweregrad von Hautläsionen und deren Komplikationen (d. h.
Infektionen, Atrophie, Juckreiz) unter Verwendung des Modified Total Lesional Sign Score (MTLSS).
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Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3), bis nach der Infusion (Tag 1; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 3, 6 und 12)
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Veränderung der Barrierefunktion der Haut
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3), bis nach der Infusion (Tag 1; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 3, 6 und 12)
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Biophysikalische Hautbewertung: Hautmessung des transepidermalen Wasserverlusts zur Überwachung der Hautbarrierefunktion und des Erythems
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Baseline (bis zu 60 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3), bis nach der Infusion (Tag 1; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 3, 6 und 12)
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Veränderung der hämolytischen Anämie (RBC)
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 1, 2, 3; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9, 12)
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Messung der Anzahl roter Blutkörperchen (Complete Blood Counts with Differential [CBCD]).
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Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 1, 2, 3; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9, 12)
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Veränderung der hämolytischen Anämie (Retikulozyten)
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 1, 2, 3; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9, 12)
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Messung der Anzahl der Retikulozyten.
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Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 1, 2, 3; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9, 12)
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Veränderung der Thrombozytopenie
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 1, 2, 3; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9, 12)
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Messen Sie die Anzahl der Blutplättchen (Vollblutbild mit Differential (CBCD)).
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Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 1, 2, 3; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9, 12)
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Veränderung der Neutropenie
Zeitfenster: Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 1, 2, 3; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9, 12)
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Messen Sie die Anzahl der Neutrophilen (Vollständiges Blutbild mit Differential [CBCD]).
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Baseline (bis zu 60 Tage vor Infusion von CD4^LVFOXP3), Präinfusion bis Postinfusion (Tag 1, 2, 3; Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9, 12)
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Veränderung des C-Peptids – Typ-1-Diabetes Prämanifestation
Zeitfenster: Baseline 60–30 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3; Nach der Infusion (Woche 4, Monat 3, 6 und 12).
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Baseline 60–30 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3; Nach der Infusion (Woche 4, Monat 3, 6 und 12).
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Veränderung des HbA1c - Typ-1-Diabetes Vor Beginn
Zeitfenster: Baseline 60–30 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3; Nach der Infusion (Woche 4, Monat 3, 6 und 12).
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Baseline 60–30 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3; Nach der Infusion (Woche 4, Monat 3, 6 und 12).
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Änderung des täglichen Insulinbedarfs – Typ-1-Diabetes-Überwachung
Zeitfenster: Ausgangswert 60–30 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3 und nach der Infusion (über 7 aufeinanderfolgende Tage vor jedem Studienbesuch);
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Mittlerer täglicher Insulinverbrauch, aufgezeichnet über 7 aufeinanderfolgende Tage vor jedem Bewertungszeitpunkt für Patienten mit Typ-1-Diabetes.
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Ausgangswert 60–30 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3 und nach der Infusion (über 7 aufeinanderfolgende Tage vor jedem Studienbesuch);
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Änderung bei hyper-/hypoglykämischen Ereignissen – Typ-1-Diabetes-Überwachung
Zeitfenster: Ausgangswert 60–30 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3 und nach der Infusion (über 7 aufeinanderfolgende Tage vor jedem Studienbesuch);
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Metriken zur kontinuierlichen Glukoseüberwachung (CGM) zur Protokollierung von Episoden hyper-/hypoglykämischer Ereignisse.
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Ausgangswert 60–30 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3 und nach der Infusion (über 7 aufeinanderfolgende Tage vor jedem Studienbesuch);
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Änderung im Autoantikörperprofil
Zeitfenster: Screening/Baseline, Post-Infusion (Woche 4, Monat 6 und 12)
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Messen Sie Autoantikörper gegen an der Krankheit beteiligte Organe (teilnehmerspezifisch): Anti-Insulin (IAA), Anti-Insel-Antigene (IA), Anti-Glutaminsäure-Decarboxylase (GAD), Anti-Zink-Transporter8 (ZNT8), Anti-Inselzellen (ICA), Anti-Leber-Nieren-Mikrosom (LKM), Anti-Thyroperoxidase (TPO), Anti-Thyreoglobulin (TG), Anti-Enterozyten, Anti-SMA
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Screening/Baseline, Post-Infusion (Woche 4, Monat 6 und 12)
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Veränderung des Kreatinins als Maß für die Nierenfunktion
Zeitfenster: Ausgangswert 60–30 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3, vor der Infusion, Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9 und 12
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Nierenfunktionsparameter, d. h. Kreatinin, im Blut und Urin messen.
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Ausgangswert 60–30 Tage vor der Infusion von CD4^LVFOXP3, vor der Infusion, Woche 1, 2, 3, 4; Monat 2, 3, 6, 9 und 12
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Änderung der PedsQL-Skala für allgemeines Wohlbefinden – Lebensqualität
Zeitfenster: Vorinfusion; Monat 6, 12
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Vorinfusion; Monat 6, 12
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Änderung der generischen PedsQL-Kernskala – Lebensqualität
Zeitfenster: Vorinfusion; Monat 6, 12
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Vorinfusion; Monat 6, 12
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Änderung der PedsQL-Skala für gastrointestinale Symptome – Lebensqualität
Zeitfenster: Vorinfusion; Monat 6, 12
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Gemessen mit der Skala für gastrointestinale Symptome: Minimalwert = 0 (nie ein Problem), Maximalwert = 4 (fast immer ein Problem).
Höhere Werte bedeuten ein schlechteres Ergebnis.
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Vorinfusion; Monat 6, 12
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Krankheitsfreies Überleben – Änderungen gegenüber dem Ausgangswert
Zeitfenster: Bis zu 15 Jahre
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Die Zeitspanne von der Zellinfusion bis zu dem Punkt, an dem der Teilnehmer ohne neue oder Verschlechterung bestehender Anzeichen oder Symptome einer Krankheit überlebt.
Die Daten werden mit der historischen krankheitsfreien Überlebenswahrscheinlichkeit verglichen.
Die Wahrscheinlichkeit des krankheitsfreien Überlebens wird unter Verwendung des Kaplan-Meier-Schätzers berechnet.
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Bis zu 15 Jahre
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Gesamtüberleben – Änderungen gegenüber dem Ausgangswert
Zeitfenster: Bis zu 15 Jahre
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Überleben der Teilnehmer
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Bis zu 15 Jahre
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Mitarbeiter und Ermittler
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Marek-Trzonkowska N, Mysliwiec M, Dobyszuk A, Grabowska M, Derkowska I, Juscinska J, Owczuk R, Szadkowska A, Witkowski P, Mlynarski W, Jarosz-Chobot P, Bossowski A, Siebert J, Trzonkowski P. Therapy of type 1 diabetes with CD4(+)CD25(high)CD127-regulatory T cells prolongs survival of pancreatic islets - results of one year follow-up. Clin Immunol. 2014 Jul;153(1):23-30. doi: 10.1016/j.clim.2014.03.016. Epub 2014 Apr 1.
- Bluestone JA, Buckner JH, Fitch M, Gitelman SE, Gupta S, Hellerstein MK, Herold KC, Lares A, Lee MR, Li K, Liu W, Long SA, Masiello LM, Nguyen V, Putnam AL, Rieck M, Sayre PH, Tang Q. Type 1 diabetes immunotherapy using polyclonal regulatory T cells. Sci Transl Med. 2015 Nov 25;7(315):315ra189. doi: 10.1126/scitranslmed.aad4134.
- Brunstein CG, Miller JS, McKenna DH, Hippen KL, DeFor TE, Sumstad D, Curtsinger J, Verneris MR, MacMillan ML, Levine BL, Riley JL, June CH, Le C, Weisdorf DJ, McGlave PB, Blazar BR, Wagner JE. Umbilical cord blood-derived T regulatory cells to prevent GVHD: kinetics, toxicity profile, and clinical effect. Blood. 2016 Feb 25;127(8):1044-51. doi: 10.1182/blood-2015-06-653667. Epub 2015 Nov 12.
- Hori S, Nomura T, Sakaguchi S. Control of regulatory T cell development by the transcription factor Foxp3. Science. 2003 Feb 14;299(5609):1057-61. doi: 10.1126/science.1079490. Epub 2003 Jan 9.
- Allan SE, Alstad AN, Merindol N, Crellin NK, Amendola M, Bacchetta R, Naldini L, Roncarolo MG, Soudeyns H, Levings MK. Generation of potent and stable human CD4+ T regulatory cells by activation-independent expression of FOXP3. Mol Ther. 2008 Jan;16(1):194-202. doi: 10.1038/sj.mt.6300341. Epub 2007 Nov 6.
- Amendola M, Venneri MA, Biffi A, Vigna E, Naldini L. Coordinate dual-gene transgenesis by lentiviral vectors carrying synthetic bidirectional promoters. Nat Biotechnol. 2005 Jan;23(1):108-16. doi: 10.1038/nbt1049. Epub 2004 Dec 26.
- Barzaghi F, Passerini L, Gambineri E, Ciullini Mannurita S, Cornu T, Kang ES, Choe YH, Cancrini C, Corrente S, Ciccocioppo R, Cecconi M, Zuin G, Discepolo V, Sartirana C, Schmidtko J, Ikinciogullari A, Ambrosi A, Roncarolo MG, Olek S, Bacchetta R. Demethylation analysis of the FOXP3 locus shows quantitative defects of regulatory T cells in IPEX-like syndrome. J Autoimmun. 2012 Feb;38(1):49-58. doi: 10.1016/j.jaut.2011.12.009. Epub 2012 Jan 20.
- Barzaghi F, Amaya Hernandez LC, Neven B, Ricci S, Kucuk ZY, Bleesing JJ, Nademi Z, Slatter MA, Ulloa ER, Shcherbina A, Roppelt A, Worth A, Silva J, Aiuti A, Murguia-Favela L, Speckmann C, Carneiro-Sampaio M, Fernandes JF, Baris S, Ozen A, Karakoc-Aydiner E, Kiykim A, Schulz A, Steinmann S, Notarangelo LD, Gambineri E, Lionetti P, Shearer WT, Forbes LR, Martinez C, Moshous D, Blanche S, Fisher A, Ruemmele FM, Tissandier C, Ouachee-Chardin M, Rieux-Laucat F, Cavazzana M, Qasim W, Lucarelli B, Albert MH, Kobayashi I, Alonso L, Diaz De Heredia C, Kanegane H, Lawitschka A, Seo JJ, Gonzalez-Vicent M, Diaz MA, Goyal RK, Sauer MG, Yesilipek A, Kim M, Yilmaz-Demirdag Y, Bhatia M, Khlevner J, Richmond Padilla EJ, Martino S, Montin D, Neth O, Molinos-Quintana A, Valverde-Fernandez J, Broides A, Pinsk V, Ballauf A, Haerynck F, Bordon V, Dhooge C, Garcia-Lloret ML, Bredius RG, Kalwak K, Haddad E, Seidel MG, Duckers G, Pai SY, Dvorak CC, Ehl S, Locatelli F, Goldman F, Gennery AR, Cowan MJ, Roncarolo MG, Bacchetta R; Primary Immune Deficiency Treatment Consortium (PIDTC) and the Inborn Errors Working Party (IEWP) of the European Society for Blood and Marrow Transplantation (EBMT). Long-term follow-up of IPEX syndrome patients after different therapeutic strategies: An international multicenter retrospective study. J Allergy Clin Immunol. 2018 Mar;141(3):1036-1049.e5. doi: 10.1016/j.jaci.2017.10.041. Epub 2017 Dec 11.
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Klinische Studien zur IPEX
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Medical College of WisconsinNational Cancer Institute (NCI); National Heart, Lung, and Blood Institute (NHLBI) und andere MitarbeiterAbgeschlossenChronische granulomatöse Krankheit | Hämophagozytische Lymphohistiozytose | Leukozytenadhäsionsmangel | Chronische aktive Epstein-Barr-Virusinfektion | HIGM-1 | IPEXVereinigte Staaten, Kanada
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Washington University School of MedicineRekrutierungSchwere kombinierte Immunschwäche | Chronische granulomatöse Krankheit | DiGeorge-Syndrom | Hämophagozytische Lymphohistiozytose | Wiskott-Aldrich-Syndrom | X-chromosomales lymphoproliferatives Syndrom | X-chromosomale Agammaglobulinämie | Chediak-Higashi-Syndrom | IPEX | Autoimmunes lymphoproliferatives... und andere BedingungenVereinigte Staaten
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Institut National de la Santé Et de la Recherche...Noch keine RekrutierungAutoimmunerkrankungen | Systemischer Lupus erythematodes | Primäre Immunschwäche | Autoimmunhepatitis | Juvenile idiopathische Arthritis | IBD | Autoimmunrheumatologische Erkrankung | Autoimmundiabetes | APECED | IPEX | Hämophagozytische Lymphohistiozytose | Autoimmunes lymphoproliferatives Syndrom | Autoimmu... und andere Bedingungen
Klinische Studien zur CD4^LVFOXP3
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Singh, Ranjan Kumar, M.D.AbgeschlossenHIV-Infektionen | Tuberkulose | Kryptokokkose | Leishmaniose | Candidiasis, Ösophagus | ToxoplasmoseIndien
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Genentech, Inc.AbgeschlossenHIV-InfektionenVereinigte Staaten
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iCell Gene TherapeuticsPeking University Shenzhen Hospital; iCAR Bio Therapeutics Ltd.RekrutierungRefraktäres T-Zell-Lymphom | T-Zell-Lymphom im RückfallChina
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University of PennsylvaniaAbgeschlossen
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Genentech, Inc.AbgeschlossenHIV-Infektionen | Immunthrombozytopenische Purpura ( ITP )Vereinigte Staaten
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National Institute of Allergy and Infectious Diseases...Genentech, Inc.Abgeschlossen
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National Institute of Allergy and Infectious Diseases...Genentech, Inc.Abgeschlossen
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Assiut UniversityUnbekanntImmunthrombozytopenie
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VIRxSYS CorporationAktiv, nicht rekrutierendHIV-InfektionenVereinigte Staaten