Comparar el tubo endotraqueal (ET) con drenaje por succión subglótica y el ET estándar en la incidencia de VAP

Los pacientes serán inscritos siguiendo criterios de inclusión-exclusión.

• Los datos clínicos y de laboratorio de referencia se registrarán en un formulario prediseñado.
• El aspirado endotraqueal se tomará en el momento de la inscripción y el día 3, día 5, día 7 y luego semanalmente hasta que el paciente esté en ventilación mecánica.

Recopilación de datos

Para cada paciente se registrarán los siguientes datos según la proforma.

Durante la Hospitalización

Se hará un seguimiento cuidadoso de todos los pacientes elegibles para detectar signos de VAP durante la hospitalización.

Además del examen clínico, se realizará un registro regular de la temperatura corporal, observación del aspecto del aspirado traqueal, recuento de leucocitos y radiografía de tórax.

Diagnóstico de VAP: Basado en los criterios del American College of Chest Physicians (ACCP):

Una asociación de una consolidación nueva o progresiva en la radiografía de tórax Más al menos dos de las siguientes variables

• fiebre > 38 grados
• leucocitosis ( > 12000) o leucopenia (
• secreciones purulentas

En el diagnóstico de VAP

Pacientes que hayan sido diagnosticados como casos de NAV, en base a los criterios anteriores.

Se realizará lavado broncoalveolar no broncoscópico (BAL) para toma de muestra microbiológica. En los pacientes en los que esté clínicamente indicado, se realizará una broncoscopia flexible y un lavado broncoalveolar. En el momento del diagnóstico de NAV se enviará también hemocultivo y urocultivo.

Coleccion de muestra

aspiración endotraqueal

Se introducirá un catéter de succión estéril de 22 pulgadas, 12 French con un extractor de mucosidad al menos 30 cm y se recolectará un mínimo de 5 ml de muestra. Los cultivos de aspirado endotraqueal se examinarán semicuantitativamente. Se realizarán pruebas de susceptibilidad bacteriana y antibiótica.

LBA protegido no broncoscópico

La muestra se recolectará mediante una trampa de succión de esputo. Se insertará un catéter de succión estéril de 47-48 cm de 16 fr a través del tubo endotraqueal hasta que encuentre resistencia y se calce allí. Luego se pasará un catéter de succión estéril de 50 cm de largo y 8 fr a través de él hasta que encuentre resistencia y se tomará la muestra. 20 ml de NS instilados, se recogerá un mínimo de 5 ml de aspirado. Si el aspirado es inferior a 5 ml, se repetirá.

LBA broncoscópico

Se tomará el consentimiento del tutor legal. El paciente recibirá una sedación adecuada; agente paralizante de acción corta para prevenir la tos durante el procedimiento Se considerará si es necesario. El tubo endotraqueal será ≥ 1,5 mm más grande que el diámetro externo del broncoscopio flexible. Los pacientes recibirán una fracción de oxígeno inspirado (FiO2) del 100% y la presión espiratoria final positiva se reducirá tanto como sea tolerado. Para maximizar la ventilación y minimizar el atrapamiento de aire, el flujo inspiratorio máximo se reducirá a ≤60 litros/min, la frecuencia respiratoria se establecerá entre 10 y 20 respiraciones/min y la alarma de presión inspiratoria máxima aumentará. El paciente será monitoreado cuidadosamente durante todo el procedimiento. El área de muestreo se elegirá en función de la ubicación del infiltrado en la radiografía de tórax.

Análisis microbiológico

Todas las muestras se sometieron a tinción de Gram y examen microscópico y se cultivaron semicuantitativamente en agar sangre de carnero, agar chocolate y agar MacConkey y se consideró significativa 104/ml de CFU. Las cepas aisladas se identificaron mediante técnicas microbiológicas estándar y las pruebas de susceptibilidad antimicrobiana se realizaron mediante el método de difusión en disco según las directrices del CLSI. Los bacilos Gram negativos se probaron frente a los siguientes antibióticos: amikacina, amoxicilina-clavulanato, cefotaxima, ceftazidima, ciprofloxacina, cefaperazona-sulbactam, meropenem, imipenem, netilimicina, piperacilina-tazobactum. Además, se analizarán la colistina y el ertapenem cuando corresponda. Los organismos grampositivos se analizarán para amikacina, netilmicina, cotrimoxazol, ceftazidima, ciprofloxacina, cefoperazona-sulbactam, penicilina, linezolid, eritromicina, vancomicina y teicoplanina.