- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT07402434
Uno Studio Prospettico di Diagnostica Avanzata in Persone con una Diagnosi Non Chiara di Fibrosi Cistica (ADVANCE-CFTR)
Validazione Diagnostica Avanzata e Valutazione Clinica Innovativa sullo Spettro CFTR (ADVANCE-CFTR): uno Studio Prospettico sui Test Funzionali del CFTR, Compresi gli Organoidi Rettali, per Migliorare l'Accuratezza della Diagnosi della Fibrosi Cistica.
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Descrizione dettagliata
BACKGROUND La diagnosi di fibrosi cistica (FC) può essere difficile in un'importante minoranza di individui (~10-15% delle diagnosi di FC), specialmente quando vengono identificati uno o due rari varianti del gene della FC (regolatore della conduttanza transmembrana della fibrosi cistica; CFTR) e il test del sudore (concentrazione di cloruro nel sudore; SCC) non è diagnostico. I biomarcatori della funzione CFTR consentono di quantificare la funzione della proteina CFTR individuale, il difetto sottostante chiave associato alla FC. Tali biomarcatori svolgono un ruolo importante nella diagnosi della FC e hanno l'ulteriore capacità chiave di misurare i benefici terapeutici delle terapie mirate al CFTR, come i modulatori CFTR. I biomarcatori attualmente validati della funzione CFTR, come SCC, la differenza di potenziale nasale (NPD) e le misurazioni della corrente intestinale (ICM), possono caratterizzare accuratamente gli individui negli estremi della funzione CFTR (sani e FC con insufficienza pancreatica (PI)), ma sono meno affidabili nei range intermedi, specialmente quando le caratteristiche cliniche sono atipiche. Questa 'diagnosi difficile' può portare sia a un esito diagnostico falso positivo che negativo, con opportunità perse per l'introduzione di trattamenti efficaci, come i modulatori CFTR. Alcuni individui rimangono non diagnosticati per molti anni, persino decenni, quindi può verificarsi una malattia significativa, associata a un deterioramento della salute. Gli individui e le loro famiglie sono spesso frustrati e disillusi da anni di incertezza. Inoltre, c'è un gruppo di individui con un fenotipo più limitato (ad esempio, pancreatite o assenza congenita bilaterale dei vasi deferenti, CBAVD), in cui non sono soddisfatti i criteri diagnostici rigorosi della FC - la loro condizione è definita disturbo correlato al CFTR (RD). Le recenti linee guida della European CF Society (ECFS) hanno evidenziato l'urgente necessità di un percorso più accurato e semplificato per la loro diagnosi.
Il servizio Difficult CF Diagnosis (DCFD) al Royal Brompton Hospital (RBH) utilizza NPD, insieme all'analisi dell'intero gene CFTR e di altri geni associati per diagnosticare casi poco chiari. Le misurazioni della corrente intestinale (ICM) - la valutazione della funzione CFTR nelle camere di Ussing utilizzando biopsie tissutali ex vivo dell'epitelio intestinale - è attualmente in fase di implementazione. È ben noto che un importante sottogruppo di pazienti rimane non diagnosticato. Più recentemente, anche i test dipendenti da CFTR negli organoidi intestinali derivati da pazienti (stabiliti al laboratorio Beekman, University Medical Center (UMC) Utrecht University, Utrecht, Paesi Bassi) si sono rivelati avere eccellenti capacità diagnostiche con il vantaggio aggiuntivo di fornire informazioni chiave di fenotipizzazione e prognosi, utilizzando due tecniche diverse: il rigonfiamento indotto da forskolina (FIS) e l'analisi morfologica (ad esempio, area del lume a stato stazionario, SLA). Entrambi si basano sulla secrezione di ioni e fluidi dipendente da CFTR nel lume dell'organoide. Gli organoidi possono anche quantificare le risposte individuali ai modulatori CFTR in laboratorio per stimare il potenziale beneficio clinico e possono essere crioconservati per studi futuri. Come dovremmo utilizzare in modo ottimale questi diversi biomarcatori nel contesto di individui difficili da diagnosticare e del loro trattamento con modulatori CFTR non è chiaro.
Lo studio ADVANCE-CFTR è uno studio di coorte prospettico di 40-50 individui con malattia difficile da diagnosticare. Saranno reclutati dal servizio Difficult CF Diagnosis (DCFD) del Royal Brompton Hospital. Saranno reclutati anche fino a 15 pazienti con FC e 15 controlli sani (senza malattia CFTR) per validare i test e ancorare gli estremi nei saggi.
Tipo di studio
Iscrizione (Stimato)
Contatti e Sedi
Contatto studio
- Nome: Emma C Russell-Jones, MBBS
- Numero di telefono: 88940 02073528121
- Email: emma.russell-jones@nhs.net
Luoghi di studio
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-
-
London, Regno Unito, SW36NP
- Royal Brompton Hospital
-
Contatto:
- Emma Russell-Jones, MBBS
- Email: emma.russell-jones@nhs.net
-
-
Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
- Bambino
- Adulto
- Adulto più anziano
Accetta volontari sani
Metodo di campionamento
Popolazione di studio
Descrizione
Criteri di inclusione:
Gruppo A: Coorte con diagnosi difficile di Fibrosi Cistica
Criteri di inclusione:
- Pazienti con FC difficile da diagnosticare*
- Adulti (≥16 anni)
- Disposti a sottoporsi a biopsia rettale
In grado di rispettare lo studio
- Definizione: Test CFTR di prima linea non diagnostico (individui che non soddisfano i criteri diagnostici per la FC [2 varianti CFTR patogene e/o concentrazione di cloruro nel sudore ≥60 mmol/L]). Da notare che ci sono alcuni individui con <2 varianti CFTR patogene dopo analisi genetica CFTR estesa ma con un SCC >60mmol/L. L'espansione del pool di pazienti per includere questi è consentita.
Gruppo B: Coorte di Pazienti con Fibrosi Cistica
Criteri di inclusione:
- Pazienti con Fibrosi Cistica confermata
- Adulti (≥16 anni)
- Disposti a sottoporsi a biopsia rettale per questo studio
- In grado di rispettare lo studio
Gruppo C: Coorte di Pazienti senza Fibrosi Cistica
Criteri di inclusione:
- Pazienti senza Fibrosi Cistica o disturbo correlato a CFTR
- Adulti (≥16 anni)
- Disposti a sottoporsi a biopsia rettale per questo studio (se sottoposti a endoscopia gastrointestinale inferiore per altri scopi)
- In grado di rispettare lo studio
Criteri di esclusione:
Gruppo A: Coorte con diagnosi difficile di Fibrosi Cistica
Criteri di esclusione:
- Controindicazione alla biopsia rettale (es. diatesi emorragica significativa)
- Storia di trapianto di polmone
- In trattamento con modulatori CFTR
- Partecipazione attuale (o partecipazione entro un mese dall'arruolamento) a una sperimentazione clinica di un prodotto medicinale sperimentale che influisce sulla funzione CFTR (es. modulatori CFTR, terapie genetiche)
- Donna incinta o in allattamento
- Incapace di fornire consenso informato
Gruppo B: Coorte di Pazienti con Fibrosi Cistica
Criteri di esclusione:
- Controindicazione alla biopsia rettale (es. diatesi emorragica significativa)
- Partecipazione attuale (o partecipazione entro un mese dall'arruolamento) a una sperimentazione clinica di un prodotto medicinale sperimentale che influisce sulla funzione CFTR (es. modulatori CFTR, terapie genetiche)
- Donna incinta o in allattamento
- Incapace di fornire consenso informato
- Escludere tutti i soggetti in cui la diagnosi di FC è in dubbio
Gruppo C: Coorte di Pazienti senza Fibrosi Cistica
Criteri di esclusione:
- Controindicazione alla biopsia rettale (es. diatesi emorragica significativa)
- Donna incinta o in allattamento
- Incapace di fornire consenso informato
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
Coorti e interventi
Gruppo / Coorte |
Intervento / Trattamento |
|---|---|
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Gruppo A - Cohorte con Diagnosi Difficile di Fibrosi Cistica
I pazienti 'difficili da diagnosticare' verranno reclutati dal servizio 'Difficile Diagnosi di FC' attraverso il nostro percorso di riferimento consolidato.
Questi pazienti avranno un test CFTR di prima linea non diagnostico (individui che non soddisfano i criteri diagnostici per la FC [2 varianti geniche CFTR che causano la FC e/o concentrazione di cloruro nel sudore ≥60 mmol/L]).
Questi pazienti avranno 16 anni o più e saranno disposti a sottoporsi a una biopsia rettale.
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Il campionamento mediante biopsia rettale sarà eseguito utilizzando pinze o un dispositivo di aspirazione secondo il metodo di Vonk et al (2020).
Le biopsie rettali saranno ottenute da personale formato e competente in un ambiente appropriato; i pazienti reclutati saranno completamente informati e avranno fornito il consenso scritto.
Una volta prelevati i campioni di biopsia, il tessuto risultante sarà processato, conservato e trasportato utilizzando protocolli di laboratorio consolidati.
Il tessuto rettale raccolto sarà utilizzato per eseguire misurazioni di corrente intestinale e creare organoidi o 'mini-organi' per consentire un'ulteriore caratterizzazione della funzione della proteina CFTR.
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Gruppo B - Gruppo di pazienti con fibrosi cistica
Pazienti di età pari o superiore a 16 anni con diagnosi confermata di Fibrosi Cistica.
Dovrebbero essere disposti a sottoporsi a una biopsia rettale.
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Il campionamento mediante biopsia rettale sarà eseguito utilizzando pinze o un dispositivo di aspirazione secondo il metodo di Vonk et al (2020).
Le biopsie rettali saranno ottenute da personale formato e competente in un ambiente appropriato; i pazienti reclutati saranno completamente informati e avranno fornito il consenso scritto.
Una volta prelevati i campioni di biopsia, il tessuto risultante sarà processato, conservato e trasportato utilizzando protocolli di laboratorio consolidati.
Il tessuto rettale raccolto sarà utilizzato per eseguire misurazioni di corrente intestinale e creare organoidi o 'mini-organi' per consentire un'ulteriore caratterizzazione della funzione della proteina CFTR.
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Gruppo C - Coorte di Pazienti senza Fibrosi Cistica
Pazienti di età pari o superiore a 16 anni senza una diagnosi di fibrosi cistica o disturbi correlati al CFTR che sarebbero disposti a sottoporsi a una biopsia rettale per questo studio (se sottoposti a un'endoscopia del tratto gastrointestinale inferiore per altri scopi).
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I campioni di tessuto della biopsia rettale saranno prelevati in modo opportunistico per questa coorte di pazienti che stanno sottoponendosi a un'endoscopia per altri motivi.
Le biopsie rettali saranno ottenute da personale formato e competente in un ambiente appropriato, i pazienti arruolati saranno pienamente informati e avranno fornito il consenso scritto.
Il tessuto rettale raccolto sarà utilizzato per eseguire misurazioni della corrente intestinale e creare organoidi o 'mini-organi' per consentire una caratterizzazione più approfondita della funzione della proteina CFTR.
Ai pazienti del Gruppo C verrà effettuato un esame del sangue per il genotipaggio del CFTR per garantire che questi pazienti siano 'controlli sani' e che non presentino varianti del gene CFTR associate alla FC.
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Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Valutazione quantitativa della funzione CFTR
Lasso di tempo: 30 mesi
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L'esito primario è una misura singola o composita della funzione CFTR derivata dalla funzione degli organoidi, dalla Concentrazione di Cloruro nel Sudore (SCC), dalla Differenza di Potenziale Nasale (NPD) e dalle Misurazioni di Corrente Intestinale (ICM).
Questi valori quantitativi vengono quindi utilizzati per correlarsi con il fenotipo clinico e la diagnosi finale, ma la misura dell'esito stesso è la misurazione funzionale del CFTR attraverso le quattro modalità di test.
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30 mesi
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Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Per fenotipare individualmente i pazienti con FC difficile da diagnosticare
Lasso di tempo: 30 mesi
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Per misurare la funzione individuale di CFTR in persone con malattia difficile da diagnosticare utilizzando molteplici test funzionali di CFTR (organoidi (test di rigonfiamento indotto da forskolina e analisi morfologica tramite IA), concentrazione di cloruro nel sudore, misurazioni della differenza di potenziale nasale e misurazioni della corrente intestinale), e per correlare questo con il loro fenotipo clinico, genotipo e diagnosi finale.
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30 mesi
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Risposta al modulatore CFTR in organoidi intestinali
Lasso di tempo: 30 mesi
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Per misurare le risposte dei modulatori CFTR negli organoidi intestinali derivati da individui con malattia difficile da diagnosticare, prelevati tramite biopsia rettale. La risposta verrà misurata utilizzando saggi di rigonfiamento indotti da Forskolina e analisi morfologica con intelligenza artificiale.
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30 mesi
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Collaboratori e investigatori
Investigatori
- Investigatore principale: Nicholas J Simmonds, Royal Brompton Hospital and Imperial College London
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- Cirilli N, Southern KW, Barben J, Vermeulen F, Munck A, Wilschanski M, Nguyen-Khoa T, Aralica M, Simmonds NJ, De Wachter E; ECFS Diagnostic Network Working Group. Standards of care guidance for sweat testing; phase two of the ECFS quality improvement programme. J Cyst Fibros. 2022 May;21(3):434-441. doi: 10.1016/j.jcf.2022.01.004. Epub 2022 Jan 19.
- Wilschanski M, Famini H, Strauss-Liviatan N, Rivlin J, Blau H, Bibi H, Bentur L, Yahav Y, Springer H, Kramer MR, Klar A, Ilani A, Kerem B, Kerem E. Nasal potential difference measurements in patients with atypical cystic fibrosis. Eur Respir J. 2001 Jun;17(6):1208-15. doi: 10.1183/09031936.01.00092501.
- De Jonge HR, Ballmann M, Veeze H, Bronsveld I, Stanke F, Tummler B, Sinaasappel M. Ex vivo CF diagnosis by intestinal current measurements (ICM) in small aperture, circulating Ussing chambers. J Cyst Fibros. 2004 Aug;3 Suppl 2:159-63. doi: 10.1016/j.jcf.2004.05.034.
- www.cftr2.com
- Waller MD, Simmonds NJ. Phenotypic variability of R117H-CFTR expression within monozygotic twins. Paediatr Respir Rev. 2016 Aug;20 Suppl:21-3. doi: 10.1016/j.prrv.2016.06.009. Epub 2016 Jun 15.
- Fingeroth JM, Fossum TW. Late-onset regurgitation associated with persistent right aortic arch in two dogs. J Am Vet Med Assoc. 1987 Oct 15;191(8):981-3.
- Cuyx S, Ramalho AS, Corthout N, Fieuws S, Furstova E, Arnauts K, Ferrante M, Verfaillie C, Munck S, Boon M, Proesmans M, Dupont L, De Boeck K, Vermeulen F; Belgian Organoid Project. Rectal organoid morphology analysis (ROMA) as a promising diagnostic tool in cystic fibrosis. Thorax. 2021 Nov;76(11):1146-1149. doi: 10.1136/thoraxjnl-2020-216368. Epub 2021 Apr 15.
- Beekman JM, Sermet-Gaudelus I, de Boeck K, Gonska T, Derichs N, Mall MA, Mehta A, Martin U, Drumm M, Amaral MD. CFTR functional measurements in human models for diagnosis, prognosis and personalized therapy: Report on the pre-conference meeting to the 11th ECFS Basic Science Conference, Malta, 26-29 March 2014. J Cyst Fibros. 2014 Jul;13(4):363-72. doi: 10.1016/j.jcf.2014.05.007. Epub 2014 Jun 2. No abstract available.
- Farrell PM, White TB, Ren CL, Hempstead SE, Accurso F, Derichs N, Howenstine M, McColley SA, Rock M, Rosenfeld M, Sermet-Gaudelus I, Southern KW, Marshall BC, Sosnay PR. Diagnosis of Cystic Fibrosis: Consensus Guidelines from the Cystic Fibrosis Foundation. J Pediatr. 2017 Feb;181S:S4-S15.e1. doi: 10.1016/j.jpeds.2016.09.064.
- Hug MJ, Derichs N, Bronsveld I, Clancy JP. Measurement of ion transport function in rectal biopsies. Methods Mol Biol. 2011;741:87-107. doi: 10.1007/978-1-61779-117-8_7.
- Solomon GM, Bronsveld I, Hayes K, Wilschanski M, Melotti P, Rowe SM, Sermet-Gaudelus I. Standardized Measurement of Nasal Membrane Transepithelial Potential Difference (NPD). J Vis Exp. 2018 Sep 13;(139):57006. doi: 10.3791/57006.
- Dekkers JF, Alieva M, Wellens LM, Ariese HCR, Jamieson PR, Vonk AM, Amatngalim GD, Hu H, Oost KC, Snippert HJG, Beekman JM, Wehrens EJ, Visvader JE, Clevers H, Rios AC. High-resolution 3D imaging of fixed and cleared organoids. Nat Protoc. 2019 Jun;14(6):1756-1771. doi: 10.1038/s41596-019-0160-8. Epub 2019 May 3.
- Vonk AM, van Mourik P, Ramalho AS, Silva IAL, Statia M, Kruisselbrink E, Suen SWF, Dekkers JF, Vleggaar FP, Houwen RHJ, Mullenders J, Boj SF, Vries R, Amaral MD, de Boeck K, van der Ent CK, Beekman JM. Protocol for Application, Standardization and Validation of the Forskolin-Induced Swelling Assay in Cystic Fibrosis Human Colon Organoids. STAR Protoc. 2020 Jun 3;1(1):100019. doi: 10.1016/j.xpro.2020.100019. eCollection 2020 Jun 19.
- Rowe SM, Clancy JP, Wilschanski M. Nasal potential difference measurements to assess CFTR ion channel activity. Methods Mol Biol. 2011;741:69-86. doi: 10.1007/978-1-61779-117-8_6.
- Boj SF, Vonk AM, Statia M, Su J, Vries RR, Beekman JM, Clevers H. Forskolin-induced Swelling in Intestinal Organoids: An In Vitro Assay for Assessing Drug Response in Cystic Fibrosis Patients. J Vis Exp. 2017 Feb 11;(120):55159. doi: 10.3791/55159.
- Morris-Rosendahl DJ, Edwards M, McDonnell MJ, John S, Alton EWFW, Davies JC, Simmonds NJ. Whole-Gene Sequencing of CFTR Reveals a High Prevalence of the Intronic Variant c.3874-4522A>G in Cystic Fibrosis. Am J Respir Crit Care Med. 2020 Jun 1;201(11):1438-1441. doi: 10.1164/rccm.201908-1541LE. No abstract available.
- Dekkers JF, Berkers G, Kruisselbrink E, Vonk A, de Jonge HR, Janssens HM, Bronsveld I, van de Graaf EA, Nieuwenhuis EE, Houwen RH, Vleggaar FP, Escher JC, de Rijke YB, Majoor CJ, Heijerman HG, de Winter-de Groot KM, Clevers H, van der Ent CK, Beekman JM. Characterizing responses to CFTR-modulating drugs using rectal organoids derived from subjects with cystic fibrosis. Sci Transl Med. 2016 Jun 22;8(344):344ra84. doi: 10.1126/scitranslmed.aad8278.
- de Winter-de Groot KM, Janssens HM, van Uum RT, Dekkers JF, Berkers G, Vonk A, Kruisselbrink E, Oppelaar H, Vries R, Clevers H, Houwen RHJ, Escher JC, Elias SG, de Jonge HR, de Rijke YB, Tiddens HAWM, van der Ent CK, Beekman JM. Stratifying infants with cystic fibrosis for disease severity using intestinal organoid swelling as a biomarker of CFTR function. Eur Respir J. 2018 Sep 17;52(3):1702529. doi: 10.1183/13993003.02529-2017. Print 2018 Sep.
- Muilwijk D, de Poel E, van Mourik P, Suen SWF, Vonk AM, Brunsveld JE, Kruisselbrink E, Oppelaar H, Hagemeijer MC, Berkers G, de Winter-de Groot KM, Heida-Michel S, Jans SR, van Panhuis H, van der Eerden MM, van der Meer R, Roukema J, Dompeling E, Weersink EJM, Koppelman GH, Vries R, Zomer-van Ommen DD, Eijkemans MJC, van der Ent CK, Beekman JM. Forskolin-induced organoid swelling is associated with long-term cystic fibrosis disease progression. Eur Respir J. 2022 Aug 18;60(2):2100508. doi: 10.1183/13993003.00508-2021. Print 2022 Aug.
- Derichs N, Sanz J, Von Kanel T, Stolpe C, Zapf A, Tummler B, Gallati S, Ballmann M. Intestinal current measurement for diagnostic classification of patients with questionable cystic fibrosis: validation and reference data. Thorax. 2010 Jul;65(7):594-9. doi: 10.1136/thx.2009.125088.
- Castellani C, De Boeck K, De Wachter E, Sermet-Gaudelus I, Simmonds NJ, Southern KW; ECFS Diagnostic Network Working Group. ECFS standards of care on CFTR-related disorders: Updated diagnostic criteria. J Cyst Fibros. 2022 Nov;21(6):908-921. doi: 10.1016/j.jcf.2022.09.011. Epub 2022 Oct 8.
- Simmonds NJ. Is it cystic fibrosis? The challenges of diagnosing cystic fibrosis. Paediatr Respir Rev. 2019 Aug;31:6-8. doi: 10.1016/j.prrv.2019.02.004. Epub 2019 Feb 28.
- Balfour-Lynn IM, Puckey M, Simmonds NJ, Davies JC. Revisiting a diagnosis of cystic fibrosis - Uncertainties and considerations. Paediatr Respir Rev. 2022 Jun;42:29-34. doi: 10.1016/j.prrv.2021.11.002. Epub 2021 Dec 8.
- Barry PJ, Simmonds NJ. Diagnosing Cystic Fibrosis in Adults. Semin Respir Crit Care Med. 2023 Apr;44(2):242-251. doi: 10.1055/s-0042-1759881. Epub 2023 Jan 9.
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Termini relativi a questo studio
Parole chiave
Termini MeSH pertinenti aggiuntivi
- Malattie genetiche, congenite
- Malattie delle vie respiratorie
- Malattie dell'apparato digerente
- Malattie polmonari
- Infante, neonato, malattie
- Malattie pancreatiche
- Malattie e anomalie congenite, ereditarie e neonatali
- Fibrosi cistica
- Tecniche investigative
- Tecniche di laboratorio clinico
- Tecniche e procedure diagnostiche
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- Test ematologici
Altri numeri di identificazione dello studio
- 362887
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