Deze pagina is automatisch vertaald en de nauwkeurigheid van de vertaling kan niet worden gegarandeerd. Raadpleeg de Engelse versie voor een brontekst.

Kwantificering van bacterieel DNA bij sepsis

28 januari 2019 bijgewerkt door: Region Örebro County

Kwantificering van bacterieel DNA bij septische intensive care-patiënten in relatie tot concentratie van antibiotica en klinisch resultaat: een prospectieve observatiestudie

Het doel van deze studie is om te evalueren of bacteriële DNA-klaring gemeten met druppel digitale Polymerase Chain Reaction (ddPCR) kan worden gebruikt als een maat voor bacteriële belasting bij septische intensive care-patiënten. Verder is het doel om een ​​mogelijke relatie te onderzoeken tussen de klaring van bacterieel DNA en de klinische uitkomst bij de septische patiënt, en de relatie tussen de concentratie van beta-lactam antibiotica en de klaring van bacterieel DNA.

Studie Overzicht

Toestand

Onbekend

Interventie / Behandeling

Gedetailleerde beschrijving

Septisch syndroom veroorzaakt door bloedbaaninfecties vormt wereldwijd een groot probleem in de gezondheidszorg en is de belangrijkste doodsoorzaak op de niet-cardiale intensive care (ICU). Ondanks voortdurende onderzoeksinspanningen op het gebied van sepsis, blijft de mortaliteit oplopen tot 12-30%.

Bij ernstige sepsis is de tijd tot adequate antibiotische therapie duidelijk gekoppeld aan overleving. Op de spoedeisende hulp is het echter een uitdaging om de oorzaak achter de klinische presentatie te achterhalen en patiënten te identificeren die het meeste baat zouden hebben bij een behandeling met antibiotica. Een willekeurig gebruik van antibiotica leidt onvermijdelijk tot bacteriële resistentie en onaanvaardbare bijwerkingen. Er is dus een grote en onvervulde medische behoefte om nieuwe diagnostische instrumenten te ontwikkelen die de clinicus kunnen informeren over wie antibiotica nodig heeft en wie er geen baat bij heeft. Bovendien zou een vroege identificatie van het oorzakelijke micro-organisme en de ontstekingsstatus van de patiënten de beslissingen over behandelingen verbeteren en de toediening van antibiotica verminderen.

Tegenwoordig is de gouden standaard voor de diagnose van bloedbaaninfecties (BSI) bloedkweek gevolgd door identificatie van soort en resistentiepatroon door standaard laboratoriumprocedures. Deze procedure wordt geassocieerd met een hoge specificiteit maar ook met een lage sensitiviteit. Mogelijke redenen voor een negatieve bloedkweek, ondanks een sterk klinisch vermoeden, kunnen onvoldoende bloedvolume in de kweekflessen zijn of antibiotische behandeling voorafgaand aan bloedafname met als gevolg dat de bacteriën niet in de flessen groeien.

In de afgelopen jaren is de polymerasekettingreactie (PCR) voorgesteld als een methode om bacterieel DNA te bepalen op basis van amplificatie van specifieke subeenheden (16S en 18S) van bacterieel ribosomaal RNA. PCR vereist een zeer kleine hoeveelheid DNA. Een ander voordeel is de mogelijkheid om bacteriesoorten te bepalen van niet-levensvatbare bacteriën door middel van multiplex PCR's. De meeste van die multiplex-PCR's hebben echter een beperkte gevoeligheid getoond, hoewel ze ook klinisch relevante pathogenen vonden die niet werden gedetecteerd met bloedkweken. Een andere beperking is dat multiplex-PCR slechts maximaal 95% van alle sepsis veroorzakende ziekteverwekkers detecteert. In een recent gepubliceerde studie concludeerde de auteur dat een geteste multiplex PCR "op volbloedmonsters" in aanvulling op de huidige op cultuur gebaseerde methoden een klinische toegevoegde waarde opleverde. De toekomstige rol van PCR en andere moleculaire technieken in de klinische setting moet verder worden geëvalueerd.

Een nieuwe methode die de diagnostiek van sepsis zou kunnen verbeteren en tevens de mogelijkheid heeft om de bacteriële DNA belasting te volgen tijdens antibioticabehandeling is Droplet Digital PCR (ddPCR). Deze techniek maakt een absolute kwantificering mogelijk van de sepsis-veroorzakende ziekteverwekker gericht op ofwel een soortspecifiek gen of het 16S ribosomaal DNA (rDNA)-gen, aanwezig in meerdere kopieën per bacterie. Bij ddPCR wordt het monster verdeeld in ongeveer 20.000 water-in-olie-druppeltjes, en in al deze druppeltjes vindt de PCR-reactie plaats. Na PCR wordt elke druppel geanalyseerd om de fractie PCR-positieve druppeltjes te bepalen die de hoeveelheid bacterieel DNA in het oorspronkelijke monster geeft. De absolute doel-DNA-matrijsconcentratie kan vervolgens worden berekend, aangezien de grootte van de druppeltjes bekend is, en door Poisson-verdelingsstatistieken te gebruiken voor de correctie van meer dan één positieve reactie in dezelfde druppel.

Om de sepsis te identificeren die de ziekteverwekker veroorzaakt, kan sequencing van het 16S rDNA-gen of een shotgun-metagenomics-benadering worden gebruikt. In het laatste geval wordt al het DNA in een monster gesequenced met behulp van Next Generation Sequencing (NGS) en kan de sepsis-veroorzakende ziekteverwekker zowel worden gedetecteerd als worden gekwantificeerd door middel van bioinformatica-gegevensanalyse.

Tijdens het septische beloop gaat de patiënt van vasodilatatie naar vasculaire lekkage en tenslotte hypotensie. Dit samen met toegevoegde intraveneuze vloeistofbehandeling zal het distributievolume verhogen met een gewijzigde farmacokinetische toestand voor toegevoegde antibiotica. Verder komt een verminderde nierfunctie veel voor bij IC-patiënten en wordt een verhoogde creatinineklaring tijdens de acute fase van sepsis steeds vaker beschreven. Daarom is het moeilijk om de optimale antibioticadosis voor de septische patiënt te anticiperen. Het is inderdaad aangetoond dat bij een aanzienlijk deel van de IC-patiënten een adequate blootstelling aan antibiotica niet wordt bereikt en dit wordt geassocieerd met een negatief klinisch resultaat.

Een ontregelde gastheerrespons is een hoeksteen van het huidige begrip van de pathofysiologie van sepsis. Aanvankelijk wordt tijdens het sepsisverloop een pro-inflammatoire respons geïnduceerd door vroege activeringsgenen, waaronder cytokines die geassocieerd zijn met ontsteking: tumornecrosefactor (TNF), interleukine-1 (IL-1), IL-12 en IL-18. Tegelijkertijd wordt een immuunsuppressie geïnduceerd door ontstekingsremmende cytokines, d.w.z. IL-10 en transformerende groeifactor. Er wordt gesuggereerd dat een verstoorde homeostase van de pro- en ontstekingsremmende respons deel uitmaakt van de ontregelde gastheerrespons bij sepsis, hoewel klinisch beschikbare biomarkers voor de identificatie ervan ontbreken. Bovendien moeten de regulerende bemiddelaars die bij dit proces betrokken zijn en de associatie met bacteriële klaring tijdens sepsis nader worden onderzocht.

Het maagdarmkanaal kan een bron van bacteriën zijn en een verergering van de septische ontsteking bij IC-patiënten, als de epitheelbarrière verstoord is. Een intacte gastro-intestinale functie is dus van cruciaal belang bij ernstig zieke patiënten. Er zijn geen klinisch beschikbare biomarkers van gastro-intestinale functie; er is echter aangetoond dat de recent beschreven acute gastro-intestinale letselscore (AGI) correleert met een nadelige uitkomst bij IC-patiënten.

Het doel van de studie is om te onderzoeken of bacterieel DNA in volbloed gemeten met ddPCR kan worden gebruikt voor het beoordelen van bacteriële klaring bij septische intensive care-patiënten. Om dit te doen, zullen de onderzoekers zoeken naar een mogelijk verband tussen de klaring van bacterieel DNA en de klaring van bacteriëmie gedetecteerd door bloedkweken.

Verder is het doel om een ​​mogelijke relatie tussen klaring van bacterieel DNA, biomarkers van ontregelde gastheerrespons en klinische uitkomst bij de septische patiënt te onderzoeken. Het resultaat wordt gemeten als: mortaliteit op de IC, mortaliteit <28 dagen, dagen op de ICU, verandering in Sequential Organ Failure Assessment Score (SOFA), tijd in geassisteerde beademing, lactaatklaring, behoefte aan vasopressoren en ernst van gastro-intestinaal letsel. Verder is het doel om de relatie te bestuderen tussen de concentratie van bèta-lactam-antibiotica, d.w.z. de minimale remmende concentratie voor de gedetecteerde bacteriën (T>MIC) en de klaring van bacterieel DNA. Het verzamelde materiaal zal ook bijdragen aan het onthullen van de relatie tussen ddPCR en shot gun-sequencing bij het detecteren van de sepsis-veroorzakende bacteriën.

Studietype

Observationeel

Inschrijving (Verwacht)

60

Contacten en locaties

In dit gedeelte vindt u de contactgegevens van degenen die het onderzoek uitvoeren en informatie over waar dit onderzoek wordt uitgevoerd.

Studiecontact

Studie Contact Back-up

Studie Locaties

Deelname Criteria

Onderzoekers zoeken naar mensen die aan een bepaalde beschrijving voldoen, de zogenaamde geschiktheidscriteria. Enkele voorbeelden van deze criteria zijn iemands algemene gezondheidstoestand of eerdere behandelingen.

Geschiktheidscriteria

Leeftijden die in aanmerking komen voor studie

18 jaar en ouder (Volwassen, Oudere volwassene)

Accepteert gezonde vrijwilligers

Nee

Geslachten die in aanmerking komen voor studie

Allemaal

Bemonsteringsmethode

Kanssteekproef

Studie Bevolking

Patiënten op de spoedeisende hulp

Beschrijving

Inclusiecriteria:

  1. Volwassen patiënt op de spoedeisende hulp met vastgestelde of vermoede sepsis en die intensieve zorg nodig heeft.
  2. Geïnformeerde toestemming door patiënt of wettelijke vertegenwoordiger.
  3. Indicatie voor beta-lactam antibiotica

Uitsluitingscriteria:

  1. < 18 jaar
  2. Patiënten en/of familieleden die de onderzoeksinformatie niet kunnen begrijpen.
  3. Anafylactische allergie voor bètalactam-antibiotica
  4. Patiënten die al met antibiotica zijn behandeld

Studie plan

Dit gedeelte bevat details van het studieplan, inclusief hoe de studie is opgezet en wat de studie meet.

Hoe is de studie opgezet?

Ontwerpdetails

  • Observatiemodellen: Cohort
  • Tijdsperspectieven: Prospectief

Cohorten en interventies

Groep / Cohort
Interventie / Behandeling
intensive care-patiënten met sepsis
Volwassen patiënten met vastgestelde of vermoede sepsis die vanuit de afdeling spoedeisende hulp zijn opgenomen op de intensive care
Gedurende de eerste 48 uur van de intensive care worden om de drie uur bloedmonsters genomen

Wat meet het onderzoek?

Primaire uitkomstmaten

Uitkomstmaat
Maatregel Beschrijving
Tijdsspanne
Bacterieel DNA gemeten met 16S ddPCR
Tijdsspanne: 48 uur
kopieën/ml
48 uur

Secundaire uitkomstmaten

Uitkomstmaat
Maatregel Beschrijving
Tijdsspanne
Concentratie van bèta-lactam-antibiotica
Tijdsspanne: 48 uur
mg/ml
48 uur
Lactaatklaring
Tijdsspanne: 48 uur
mmol/L, klaring %
48 uur
BANK
Tijdsspanne: IC-verblijf tot 30 dagen
Sequentiële beoordelingsscore voor orgaanfalen, van 0 (normaal) tot 24 (hoogste orgaandisfunctie)
IC-verblijf tot 30 dagen
Tijd in geassisteerde ventilatie
Tijdsspanne: IC-verblijf tot 30 dagen
uur
IC-verblijf tot 30 dagen
Behoefte aan vasopressoren
Tijdsspanne: IC-verblijf tot 30 dagen
mcg/kg/uur
IC-verblijf tot 30 dagen
Dagen op de IC
Tijdsspanne: IC-verblijf tot 30 dagen
Dagen
IC-verblijf tot 30 dagen
AGI-score
Tijdsspanne: IC-verblijf tot 30 dagen
Acute gastro-intestinale letselscore 0 (normaal) tot 4 (levensbedreigende gastro-intestinale complicaties)
IC-verblijf tot 30 dagen
Sterfte op de IC
Tijdsspanne: IC-verblijf tot 30 dagen
Overlijden tijdens ICU-verblijf
IC-verblijf tot 30 dagen
Sterfte van 28 dagen
Tijdsspanne: 28 dagen
Voorval van overlijden op dag 28
28 dagen
Gastro-intestinale complicaties
Tijdsspanne: 28 dagen
Optreden van gastro-intestinale complicaties, waaronder gastro-intestinale bloedingen, gastro-intestinale ischemie, pancreatitis en ileus
28 dagen
Intestinaal vetzuurbindend eiwit (I-FABP)
Tijdsspanne: 48 uur
picogram/mL, biomarker van gastro-intestinaal letsel
48 uur
Citrulline
Tijdsspanne: 48 uur
nmol/mL, biomarker van gastro-intestinaal letsel
48 uur
Nucleair DNA
Tijdsspanne: 48 uur
kopieën/ml
48 uur
Cytokines (Th1- en Th2-signatuurpaneel)
Tijdsspanne: 48 uur
pg/ml
48 uur
Bloedcelpopulaties
Tijdsspanne: 48 uur
Gemiddelde fluorescentie-intensiteit/antilichamen/cel. Monocyten, granulocyten, T-cellen en van myeloïde afgeleide stamcellen, waaronder oppervlaktemarkers zoals PD-1 (Programmed cell death protein 1), PD-L1 (Programmed death ligand 1) en HLA-DR (Human leukocyte Antigen - DR isotype )
48 uur
HLA-DR-messenger-RNA (mRNA)
Tijdsspanne: 48 uur
verhouding/referentiegen
48 uur
Procalcitonine
Tijdsspanne: 48 uur
mcg/L
48 uur
MicroRNA (miRNA)
Tijdsspanne: 48 uur
Relatieve expressie/verhouding referentiegen, transcriptomische en kwantitatieve PCR-gebaseerde meting
48 uur

Medewerkers en onderzoekers

Hier vindt u mensen en organisaties die betrokken zijn bij dit onderzoek.

Onderzoekers

  • Hoofdonderzoeker: Jan Källman, PhD, Region Örebro County
  • Hoofdonderzoeker: Hans Hjelmqvist, Phd, Region Örebro County

Studie record data

Deze datums volgen de voortgang van het onderzoeksdossier en de samenvatting van de ingediende resultaten bij ClinicalTrials.gov. Studieverslagen en gerapporteerde resultaten worden beoordeeld door de National Library of Medicine (NLM) om er zeker van te zijn dat ze voldoen aan specifieke kwaliteitscontrolenormen voordat ze op de openbare website worden geplaatst.

Bestudeer belangrijke data

Studie start (Werkelijk)

7 januari 2019

Primaire voltooiing (Verwacht)

31 december 2021

Studie voltooiing (Verwacht)

31 mei 2022

Studieregistratiedata

Eerst ingediend

4 december 2018

Eerst ingediend dat voldeed aan de QC-criteria

19 december 2018

Eerst geplaatst (Werkelijk)

20 december 2018

Updates van studierecords

Laatste update geplaatst (Werkelijk)

29 januari 2019

Laatste update ingediend die voldeed aan QC-criteria

28 januari 2019

Laatst geverifieerd

1 december 2018

Meer informatie

Termen gerelateerd aan deze studie

Plan Individuele Deelnemersgegevens (IPD)

Bent u van plan om gegevens van individuele deelnemers (IPD) te delen?

Onbeslist

Informatie over medicijnen en apparaten, studiedocumenten

Bestudeert een door de Amerikaanse FDA gereguleerd geneesmiddel

Nee

Bestudeert een door de Amerikaanse FDA gereguleerd apparaatproduct

Nee

Deze informatie is zonder wijzigingen rechtstreeks van de website clinicaltrials.gov gehaald. Als u verzoeken heeft om uw onderzoeksgegevens te wijzigen, te verwijderen of bij te werken, neem dan contact op met register@clinicaltrials.gov. Zodra er een wijziging wordt doorgevoerd op clinicaltrials.gov, wordt deze ook automatisch bijgewerkt op onze website .

Klinische onderzoeken op Sepsis

Klinische onderzoeken op Bloedafname

3
Abonneren